MODELO DE ANESTESIA GERAL INTRAMUSCULAR
EM COELHOS, PARA CIRURGIA EXPERIMENTAL *
HENRI CHAPLIN RIVOIRE**
DJALMA JOSÉ FAGUNDES***
MARIA DO CARMO F. TRAVERSI****
PAUL G. KINAS*****
RESUMO
A anestesia geral de pequenos animais para cirurgia experimental é uma
das dificuldades encontradas pelos pesquisadores. Este trabalho tem o
objetivo de demonstrar àqueles que utilizam coelhos em cirurgia
experimental e não estão habituados com técnicas anestésicas, ou não
possuem aparelhos de anestesia apropriados, um modelo de anestesia e
analgesia intramuscular, simples e fácil de executar, mas com a segurança
necessária para a realização dos procedimentos operatórios e com
duração média suficiente, mostrando-se altamente eficaz.
PALAVRAS-CHAVES: anestesia, analgesia, coelhos, cirurgia
ABSTRACT
Full anesthesia of small animals for experimental surgery is one of the
difficulties for researchers. This work has the purpose of demonstrating to
researchers that use rabbits in experimental surgery but are not
accustomed with anesthetic techniques, or does not have devices for
appropriate anesthesia, a model of anesthesia and analgesia, intramuscular, simple and easy, but with the necessary safety for the surgical
procedures and with enough average duration, and highly effective.
KEYWORDS: anesthesia, analgesia, rabbits, surgery
1 – INTRODUÇÃO
A utilização de coelhos em cirurgia experimental muitas vezes é
limitada pela dificuldade das técnicas anestésicas, sendo o coelho um
animal de resposta muito lábil e com grande instabilidade às dosagens
anestésicas. Apresenta grande dificuldade para intubação endotraqueal
Trabalho realizado na disciplina de Técnica Operatória e Cirurgia Experimental – Dep. de
Cirurgia – FURG – RS
Professor do Dep. de Cirurgia – FURG; Mestre em Cirurgia – UNIFESP – EPM; e-mail:
henri@mikrus.com.br
***
Professor e coordenador do PPG em Cirurgia e Experimentação – UNIFESP – EPM;
Doutor em Cirurgia – UNIFESP – EPM.
****
Médica veterinária, técnica do Biotério Convencional Controlado da FURG.
*****
Professor do Dep de Matemática – FURG; Doutor em Estatística – UBC, Canadá.
*
**
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
39
em mãos inexperientes, e muitas vezes ocorre óbito na tentativa de
manutenção do plano anestésico cirúrgico3.
A anestesia geral é de eleição para os procedimentos operatórios
experimentais, assim como a analgesia destes animais, e a manutenção
do plano anestésico para que não exista dor e sofrimento durante o
experimento3.
Os animais devem ser submetidos a medicação pré-anestésica
para que ocorra relaxamento e pequena sedação antes da indução da
anestesia. Para esta finalidade optamos por usar diazepam, que é um
benzodiazepínico. Para a anestesia geral intramuscular utilizamos uma
combinação de cloridrato de tiletamina, anestésico geral da família das
cicloexanonas, e cloridrato de zolazepam, tranquilizante e miorrelaxante
da família dos benzodiazepínicos. E como analgésico foi utilizado citrato
de fentanila9.
A tiletamina foi descrita pela primeira vez em 1969. É uma
substância que pertence à mesma categoria farmacológica da
fenciclidina e da quetamina. É um agente anestésico dissociativo que
produz uma anestesia do tipo cataleptóide, com uma analgesia muito
rápida, de duração superior à da anestesia propriamente dita14.
Após uma injeção intramuscular única, o pico sérico de tiletamina
é atingido dentro de três minutos e a meia vida obtida é de 75 a 150
minutos, dependendo do animal. Seu metabolismo é hepático e a
eliminação ocorre por via urinária, essencialmente sob a forma de
compostos inativos. A eliminação total (100% da dosagem injetada)
ocorre após oito horas da injeção do fármaco14.
Experimentos em várias espécies animais demonstram que a
tiletamina não apresenta efeitos mutagênicos, teratogênicos ou
embriotóxicos14.
Sob vários aspectos, a farmacodinâmica da tiletamina é similar à
da quetamina, mas sua potência e duração de ação são intermediárias
entre as da fenciclidina, a mais potente, e as da quetamina, a menos
potente14.
O estado anestésico induzido por esta droga é caracterizado por
uma evidência eletroencefalográfica (EEG) de dissociação entre o
tálamo e o sistema límbico. Esse efeito parece ser produzido através da
interrupção da transmissão ascendente da parte inconsciente para a
parte consciente do cérebro, mais do que através de uma depressão
generalizada de todos os centros cerebrais. Esse tipo de anestesia
induz o animal a um estado cataleptóide no qual os olhos permanecem
entre-abertos com um sutil nistagmo, e onde há persistência de reflexos
pupilares, palpebrais e laríngeos, com graus variáveis de
hipertonicidade ou movimentos reflexos músculo-esqueléticos,
40
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
independentemente do estímulo cirúrgico14.
O zolazepam é um derivado benzodiazepínico que apresenta
propriedades tranqüilizantes e miorrelaxantes. É um potente agente
anticonvulsivante, com forte ação ansiolítica e depressora da atividade
motora espontânea, mas com mínima depressão da função
cardiorrespiratória14,11.
Os benzodiazepínicos provocam rápida indução e curta duração
de ação, com ausência de efeitos analgésicos. São utilizados em
medicina veterinária como modificadores do comportamento, como prémedicamentos, como indutores de anestesia, como adjuvantes na
neuroleptoanalgesia e como agentes anticonvulsivantes 14.
Após administração intramuscular única de zolazepam (10 mg.Kg-1),
o pico sérico é alcançado em três minutos e sua vida média é de 60 a
270 minutos de acordo com o tipo de animal. Seu metabolismo é
hepático. A eliminação total ocorre em torno de oito horas,
essencialmente sob a forma de metabólitos na urina14.
Assim como a tiletamina, experimentos em várias espécies
demonstraram que o zolazepam não apresenta efeitos mutagênicos,
teratogênicos ou embriotóxicos14,10.
Quando utilizada a combinação tiletamina/zolazepam, não se
deve utilizar como pré-anestésico drogas da família das fenotiazinas –
acepromazina, clorpromazina – pois seus efeitos cardiopressor e
hipotérmico poderão ser prejudiciais14,12.
2 – OBJETIVOS
O objetivo geral deste trabalho é demonstrar um modelo de
anestesia geral utilizando a via intramuscular, em coelhos, que
proporcione facilidade de execução, tenha segurança para ser
manuseado por pesquisadores que não tenham habilidade em técnicas
anestésicas mais sofisticadas, que proporcione um bom tempo de plano
anestésico para a execução dos procedimentos operatórios
experimentais e que não cause óbitos de animais durante a indução ou
manutenção anestésica.
O objetivo específico é demonstrar um modelo de anestesia geral
em coelhos por meio da via intramuscular, para cirurgia experimental.
3 – MATERIAIS E MÉTODOS
Foram utilizados 20 coelhos (Oryctolagus cuniculus), femêas, com
idade entre oito e dez meses, peso entre 3.700 e 4900 g, brancos, da
linhagem Nova Zelândia, provenientes da Cabanha Nova Zelândia, do
município de Guaíba-RS.
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
41
Os animais foram alojados em sala própria para criação de
coelhos do biotério convencional controlado da FURG, por um período
de 15 dias para adaptação, sob supervisão da médica veterinária
responsável. Foram alimentados com ração peletizada própria para
coelhos e receberam hidratação ad libitum.
Este experimento teve aprovação da Comissão de Ética do
Departamento de Cirurgia da FURG e observou as normas do Colégio
Brasileiro de Experimentação Animal (COBEA).
Foi estabelecido que os animais ficariam em jejum para líquidos e
sólidos por um período de 12 horas antes da realização dos
procedimentos.
Como pré-anestésico foi utilizado diazepam (Diazepan® 10 mg,
solução injetável, Laboratório Cristália); como anestésico, uma
combinação de cloridrato de tiletamina com cloridrato de zolazepam
(Zoletil® 50, Laboratório Virbac do Brasil), e como analgésico, citrato de
fentanila (Fentanil® 0,05 mg, Laboratório Cristália).
O Zoletil 50®, Figura 1, vem apresentado em dois frascosampolas, um contendo liofilizado com 125 mg de cloridrato de tiletamina,
125 mg de cloridrato de zolazepam e excipiente q.s.p. 660 mg; o outro
com 5 ml de água esterilizada apirogênica como diluente. A
reconstituição deve ocorrer por ocasião do procedimento. Se sobrar
anestésico no frasco, pode ser reaproveitado num período de até oito
dias, desde que seja mantido refrigerado à 4º C, mantendo dessa
maneira suas propriedades anestésicas. Este medicamento foi adquirido
por compra em casas especializadas em produtos veterinários, com
prescrição de médico-veterinário em receituário azul.
42
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
FIGURA 1 – Apresentação comercial do Zoletil 50®
O protocolo de utilização dos fármacos está descrito no quadro 1.
O pré-anestésico, o anestésico e o analgésico foram injetados utilizando
a via intramuscular nos membri pelvini (membros pélvicos)
aleatoriamente.
QUADRO 1 – Dosagens dos medicamentos utilizados para a pré-anestesia, anestesia e
analgesia.
PRÉ-ANESTÉSICO
DIAZEPAN 10
ANESTÉSICO
ZOLETIL 50
ANALGÉSICO
FENTANIL 0,05
0,5 mg.Kg-1
25 mg.Kg-1
0,05 mcg.Kg-1
REFORÇO
1/3 DOSAGEM INICIAL
DO ANESTÉSICO
QUANDO NECESSÁRIO
O medicamento pré-anestésico foi injetado 15 minutos antes da
indução anestésica, estando o animal ainda dentro da sua gaiola de
alojamento. Passado esse tempo, foi levado para a sala de cirurgias,
onde foi fixado em calha própria para procedimento operatório em
coelhos, recebendo a injeção do anestésico e o analgésico, sendo
cronometrado o tempo para estabelecer o plano anestésico cirúrgico
desejado: estágio III – 3º plano, que era pesquisado pelo
desaparecimento do reflexo ao estímulo doloroso interdigital (na
membrana entre as unhas). Os animais foram divididos aleatoriamente
em dois grupos. O Grupo I (10 animais) foi submetido a procedimento
cirúrgico intra-abdominal, sendo que o peritoneum parietale (peritoneo
parietal) é a estrutura anatômica que apresenta maior grau de
sensibilidade ao estímulo doloroso, e o Grupo II (10 animais) foi
submetido a procedimento cirúrgico endoscópico em tubas uterinas por
via transvaginal.
Ficou estabelecido que o reforço anestésico seria utilizado
quando o animal apresentasse algum tipo de reatividade, e este seria
equivalente a 1/3 da dosagem inicial do anestésico e repetido quantas
vezes se fizessem necessárias.
Os animais, durante os procedimentos operatórios, ficaram
monitorados pela médica veterinária, sendo observadas as freqüências
respiratória e cardíaca, assim como a eliminação de secreções pela via
respiratória superior, já que estes animais não foram atropinizados.
Após o procedimento operatório o animal era novamente alojado
em sua gaiola e controlado o tempo para sua recuperação, e após 12
horas era liberada a ração e a hidratação oral.
O tempo anestésico considerado foi aquele entre a instalação do
plano anestésico cirúrgico e a recuperação do animal com tendência a
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
43
levantar na gaiola.
O estudo estatístico foi realizado pelo Departamento de
Matemática da FURG, que utilizou o teste de Student, o teste de MannWhitney e o teste Exato de Fischer.
4 – RESULTADOS
TABELA 1 – Demonstrando o peso dos animais, doses do pré-anestésico, anestésico e
analgésico, e reforços, assim como os tempos da operação e da anestesia.
GI-01
GI-02
GI-03
GI-04
GI-05
GI-06
GI-07
GI-08
GI-09
GI-10
GII-11
GII-12
GII-13
GII-14
GII-15
GII-16
GII-17
GII-18
GII-19
GII-20
PESO1 DIAZEP
4.700 0,47 mL
4.600 0,46 mL
4.500 0,45 mL
3.700 0,37 mL
4.400 0,44 mL
4.200 0,42 mL
4.100 0,41 mL
4.500 0,45 mL
4.600 0,46 mL
4.800 0,48 mL
3.830 0,38 mL
3.700 0,37 mL
4.900 0,49 mL
4.500 0,45 mL
4.740 0,47 mL
3.370 0,34 mL
4.100 0,41 mL
4.520 0,45 mL
4.300 0,43 mL
4.100 0,41 mL
HORA1
08:35
09:30
10:20
10:50
11:30
11:00
10:30
12:20
13:45
13:10
07:45
08:20
08:23
09:00
08:50
09:53
09:53
11:55
12:00
15:45
ZOLETIL
1,17 mL
1,15 mL
1,12 mL
0,92 mL
1,10 mL
1,05 mL
1,02 mL
1,12 mL
1,15 mL
1,20 mL
0,95 mL
0,92 mL
1,22 mL
1,12 mL
1,17 mL
0,83 mL
1,02 mL
1,12 mL
1,07 mL
1,02 mL
HORA2
09:10
09:53
10:30
11:05
11:40
12:05
12:35
13:05
13:40
14:00
08:03
08:50
08:53
09:15
09:45
10:25
11:05
12:00
12:45
16:00
REFOR
0,0 mL
0,1 mL
0,2 mL
0,0 mL
0,0 mL
0,2 mL
0,2 mL
0,2+0,2
0,2 mL
0,2 mL
0,3+0,3
0,2+0,2
0,3+0,3
0,0 mL
0,3+0,4
0,0 mL
0,0 mL
0,4+0,4
0,0 mL
0,0 mL
FENTAN
0,2 mL
0,2 mL
0,2 mL
0,15 mL
0,2 mL
0,2+0,1
0,2 mL
0,2 mL
0,2 mL
0,2 mL
0,2+0,2
0,2 mL
0,25 mL
0,20 mL
0,75 mL
0,5 mL
0,5+0,3
0,5 mL
0,2 mL
0,2 mL
PLANO
09:30
10:00
10:40
11:15
11:45
12:10
12:45
13:15
13:45
14:07
08:10
08:55
09:00
09:25
10:00
10:40
11:15
12:15
13:00
16:20
DUROPE
0,20 h
0,17 h
0,15 h
0,16 h
0,15 h
0,20 h
0,15 h
0,18 h
0,13 h
0,11 h
0,35 h
0,35 h
0,45 h
0,45 h
0,30 h
0,35 h
0,45 h
0,40 h
0,45 h
0,40 h
TEPANE
1:00 h
1:17 h
1:35 h
1:05 h
1:25 h
2:00 h
1:35 h
2:15 h
2:10 h
1:20 h
1:50 h
1:45 h
1:47 h
1:35 h
2:30 h
2:10 h
2:20 h
2:20 h
1:45 h
1:30 h
TABELA 2 – Demonstrando o teste de Student.
G1
Variável
Anest_Tot
Durop_Min
T_An_Min
Média
1.269
16.0
94.2
G2
DP
0.169
2.86
26.28
Média
1.354
39.5
117.3
DP
0.405
5.503
20.96
Student
t
p
-0.614
0.5503
-11.977
0.0000
-2.173
0.0437
Razão de Variâncias
F
p
5.77
0.0155
3.68
0.0655
1.57
0.5103
TABELA 3 – Demonstrando o teste de Mann-Whitney.
Variável
Mediana
Mínimo
Máximo
Mediana
Mínimo
Máximo
Anest_Tot
Durop_Min
T_An_Min
1.28
15.5
90.0
0.92
11.0
60.0
1.52
20.0
135.0
1,22
40.0
109.0
0.83
30.0
90.0
1.92
45.0
150.0
U
p
49,5
0.00
22.5
0.9699
0.0002
0.0376
TABELA 4 – Demonstrando os reforços anestésicos.
44
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
Grupo 1
Grupo 2
Total (linha)
0
2
5
7
Número de Reforços
1
7
0
7
2
1
5
6
Total
(Coluna)
10
10
20
5 – DISCUSSÃO
Durante o experimento para avaliação deste modelo anestésico,
não ocorreu nenhum óbito decorrente da indução e da manutenção
anestésica. A recuperação ocorreu de maneira serena, com despertar
tranqüilo, e não houve agitação psicomotora dos animais.
Verificou-se que o Grupo II teve tempo médio sob efeito da
anestesia significativamente maior que o Grupo I, segundo o teste t de
Student para amostras independentes e confirmação para a mediana
com teste U de Mann-Whitney. Apresentou 117,3 minutos, com desviopadrão de 20,96 para o Grupo II e 94,2 minutos com desvio-padrão de
26,28 para o Grupo I.
O tempo médio de duração dos procedimentos cirúrgicos foi
maior no Grupo II (39,5 minutos) que no Grupo I (16 minutos), verificado
pelo teste t de Student para amostras independentes e confirmação
para a mediana com teste U de Mann-Whitney.
Quanto à quantidade total de anestésico utilizado, incluindo os
reforços, não apresenta diferença em média entre os grupos: Grupo
I= 1,269 ml e Grupo II= 1,354 ml. No entanto, o Grupo II apresenta
variabilidade significativamente maior que o Grupo I (F= 5,77;
p=0,0155), com coeficientes de variabilidade de 29,9% e 13,3% para os
Grupos II e I, respectivamente.
Os reforços anestésicos foram utilizados em maior número de
animais do Grupo I (oito animais) do que do Grupo II (cinco animais).
Entretanto, esta diferença não é estatisticamente relevante, conforme o
teste exato de Fischer (p=0,3498).
Técnicas diversas têm sido descritas para a anestesia de animais de
diferentes portes, com vários graus de complexidade, e exigem o
envolvimento de profissional especializado, nem sempre disponível para a
realização e utilização do tempo necessário nas pesquisas biomédicas7.
A labilidade da resposta dos coelhos aos procedimentos
anestésicos, tanto medicamentosos como instrumentais, é citada por
autores de pesquisas com a finalidade de desenvolver protocolos
anestésicos3,11,12.
Os coelhos apresentam depressão respiratória e cardíaca quando
é usada a combinação tiletamina-zolazepan-xilazina, havendo
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
45
necessidade de oxigenoterapia concomitante2.
Não foram detectados efeitos mutagênicos ou teratogênicos nem
embriotóxicos em primatas com a combinação tiletamina-zolazepan10.
Neste protocolo foi utilizado benzodiazepínico como medicação
pré-anestésica, não causando alterações nos animais:, quando foi
usada levopromazina ou atropina como pré-anestésico, ocorreu
potencialização do efeito anestésico da associação ou potencialização
da taquicardia induzida pela droga, respectivamente8.
A avaliação dos efeitos da anestesia em coelhos com cetaminaxilazina, cetamina-diazepam, pentobarbital ou tiopental demonstrou
alterações séricas do colesterol, triglicerídeos, desidrogenase láctica, sódio,
potássio, cloretos, cálcio ou fósforo, dependendo do protocolo utilizado6.
Quando comparada a emissão de gases anestésicos do
isofluorane por máscara pediátrica ou tubo endotraqueal com e sem
balonete em coelhos, foi detectada a emissão destes gases13.
Sistemas circulares de anestesia têm sido propostos, mas com
pouca utilização em coelhos, devido às dificuldades técnicas e práticas,
com o intuito principal de diminuir o esforço respiratório3,4,5.
Foi utilizada uma combinação de cetamina, xilazina e
buprenorfina ou cetamina, medetomidina e buprenorfina por meio da via
intramuscular em coelhos para indução anestésica, mas foram
entubados e mantidos anestesiados com isofluorane1.
6 – CONCLUSÕES
A anestesia geral em coelhos, pela via intramuscular, utilizando o
protocolo proposto, é eficaz para os procedimentos operatórios realizados.
A utilização desse protocolo anestésico proposto não causa
óbitos em coelhos.
REFERÊNCIAS
1 – DIFILIPPO, S. M.; NORBERG, P. J.; SUSAN, U. D.; SORINO, A. M.; REIM, D. A. A
comparison of xylazine and medetomidine in an anesthetic combination in New Zealand
withe rabbits. Contemp. Top. Lab. Anim. Sci., v. 43, n. 1, p. 32-34, 2004.
2 – DUPRAS, J.; VACHEM, P.; CUVELLAZ, S.; BLAIS, D. Anesthesia of the New Zealand
rabbit using the combination of tiletamina-zolazepan and ketamine-midazolam with or
without xylazine. Can. Vet. J., v. 42, n. 6, p. 455-460, 2001.
3 – FONSECA, N. M.; GOLDENBERG, S.; GOMES, P. O.; LIMA, C. A. p. Anestesia em
coelhos. Acta Cir. Bras., v. 11, n. 2, p. 82-104, 1996.
4 – FONSECA, N. M.; REIS, M. R. C.; FERNANDES, L. M. A.; REZENDE, E. S. Esforço
respiratório do coelho em diferentes sistemas de anestesia: T de Ayre, Bain-Spoerel e
Fonseca-Goldenberg. Rev. Bras. Anestesiol., v. 49, n. 4, p. 249-256, 1999.
5 – FONSECA, N. M.; REIS, M. R. C.; LACERDA, M. S.; LEÃO, C. M. Comparação
dos efeitos da ventilação espontânea e controlada manual com os sistemas de
46
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
Fonseca-Goldenberg e de Bain-Spoerel em coelhos. Rev. Bras. Anestesiol., v. 50, n. 5,
p. 363-374, 2000.
6 – GIL, A. G.; SILVAN, G.; ILLERA, M.; ILLERA, J. C. The effects of anesthesia and the
clinical chemistry of New Zealand white rabbits. Contemp. Top. Lab. Anim. Sci., v. 43, n. 3,
p. 25-29, 2004.
7 – MASSONE, F. Anestesia de 1 a 10. Nosso Clínico, n. 3, p. 7-14, 1998.
8 – PAMPERMAYER, L. G.; MASSONE, F.; NUNES, N.; PARDO, J. Levopromazina e
atropina como medicação pré-anestésica na anestesia pela associação tiletamina/
zolazepan em cães. Ciênc. Rural, v. 28, n. 1, p. 65-70, 1998.
9 – RIVOIRE, H. C. Aplicação transvaginal de n-butil-2-cianoacrilato e o estudo da
perviedade das tubas uterinas de coelhas. São Paulo, 2001. Tese [Mestrado em Cirurgia]
– Escola Paulista de Medicina, Universidade Federal de São Paulo, 2001.
10 – SANTOS, F. G. A.; SALES, E. F.; BICCA-MARQUES, J. C.; CIEGARO-MARQUES,
C.; FARIAS, E. M. P. Cloridrato de tiletamina associado com cloridrato de zolazepan na
tranqüilização e anestesia de calitriquídeos. Arq. Bras. Méd. Vet. Zootec., v. 51, n. 6,
p. 539-545, 1999.
11 – SCHOSSLER, J. E.; SAMPAIO, A. A.; SCHOSSLER, D. R. Anestesia geral em
coelhos pela tiletamina-zolazepan associada ao fentanil-droperidol. Rev. Cen. Ci. Ru.,
v. 19, n. 3, p. 267-272, 1989.
12 – SILVERMAN, J.; HUHNDORF, M.; BALK, M.; SLATER, G. Evaluation of a
combination of tiletamina and zolazepan as an anesthetic for laboratory rodents. Lab.
Anim. Sc., v. 33, n. 5, p. 457-460, 1983.
13 – SMITH, J. C.; ROBERTSON, L. D.; ANHLL, A.; MARCH, T. J.; DERRING, C.; BALEN,
B. Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease
of use and waste gas emissions. Contemp Top Lab Anim Sci 2004;43(4):22-5.
14 – VIRBAC DO BRASIL. Zoletil 50: uma revisão farmacológica. Brasil: Departamento de
Pesquisa e Desenvolvimento, 1998.
Recebido: 12/04/05
Aceito: 30/05/05
VITTALLE, Rio Grande, 16(2): 39-47, 2004.
47