FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS
DIVISION DE ESTUDIOS DE POSTGRADO
ESTUDIO ECOFISIOLOGICO Y TECNICAS DE
GERMINACION DE 9 ESPECIES NATIVAS
EN MARIN, NUEVO LEON. zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQ
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QUE PARA OPTAR AL GRADO DE MAESTRO
EN CIENCIAS CON ESPECIALIDAD DE BOTANICA
PRESENTA :
MAURO RODRIGUEZ CABRERA
MONTERREY, NUEVO LEON
OCTUBRE DE 1996
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UNIVERSIDAD A O » / Oí lí!fJ
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UNIVERSIDAD AUTONOMA DE NUEVO LEON
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS
DIVISION DE ESTUDIOS DE POSTGRADO
ESTUDIO ECOFISIOLOGICO Y TECNICAS DE GERMINACION DE 9
ESPECIES NATIVAS EN MARIN, NUEVO LEON
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcba
TESIS
Que para optar al Grado de Maestro en Ciencias con especialidad en Botánica
Presenta
MAURO RODRIGUEZ CABRERA
LA COMISION DE TESIS
Dr.Ratikanta Maití
Dr. Rahim Foroughbakhch
Director (Presidente)
Co-Director (Secretario)
Asesor
MONTERREY NUEVO LEON
OCTUBRE DE 1996
DEDICATORIA zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYXVTSRPONMLJIHGFEDCBA
A DIOS. Por darme la oportunidad de estar en este mundo.
A MIS PADRES:
Guadalupe García Sandoval (tutor) y Elena Cabrera Oiguín
Con amor y respeto por su apoyo en todo momento
A MI FAMILIA :
María Guadalupe Torres Alvarado (esposa), Elena Guadalupe e
Itzel Alejandra Rodríguez Torres (hijas) : A quienes les debo la
felicidad más grande de mi vida
A MIS AMIGOS:
A MIS MAESTROS:
Por todos los momentos agradables que pasamos juntos
Especialmente al Dr. Efraím Hernández Xolocotzi (q.e.p.d.)
por
sus enseñanzas que dejaron huella en muchos
profesionistas de nuestro México
AGRADECIMIENTOS zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYXVTSRPONMLJIHGFEDC
A la Facultad de Agronomía por todas las facilidades brindadas para la realización
de la presente investigación
AL Dr. Ratikanta Maití Por su amistad, valiosa dirección y apoyo para la
realización de esta investigación
Al Dr. Rahim Foroughbakhch Por su asesoría, material facilitado y revisión del
escrito
A la Dra. Leticia Villarreal Por la revisión del escrito original y por sus acertadas zyxwvutsrqponmlk
*
criticas y sugerencias a lo largo de la investigación
Al M. C. Ernesto Sánchez Alejo. Por la revisión del escrito
Al M. C. Jorge L. Hdz. P. Por su asesoría y ayuda durante la realización de los
estudios de ultraesmictura
A los biólogos: María Concepción Valadés, María Luisa Cárdenas y
José Gpe. Almanza. Por su apoyo constante en las diversas etapas de la
investigación.
La presente investigación se realizó con el apoyo financiero de CONACYT
concedido al Dr Rahim Foroughbakhch, dentro de el proyecto
de investigación "Estudio ecofisiológico y manejo de especies
maderables sobre explotadas del noreste de México"
Registrado bajo el número de convenio 1650 p-b 9507.
Nuestro sincero agradecimiento por
el apoyo recibido
CONTENIDO zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIH
PAGINA
INDICE DE TABLASzyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYXVTSRPONMLJIHGFEDCBA
vi
INDICE DE FIGURAS
vii
RESUMEN
ix
1. INTRODUCCION
1
Objetivos
2
Hipótesis
3
2. REVISION DE LITERATURA
4
2.1. Características generales de las especies
. 4
2.2. Antecedentes sobre el proceso de germinación de las semillas
17
2.2.1. Condiciones necesarias para el proceso de germinación
17
2.3. Proceso de Letargo
20
2.3.1 Tipos de letargo.
23
2.3.2. Métodos para el rompimiento del letargo
25
3. MATERIALES Y METODOS
30
3.1. Ubicación y características del área de estudio
30
3.2. Especies estudiadas
31
3.3. Fase de campo
32
3.3.1. Estudio ecológico
32
3.3.2. Estudio fenològico
32
3.3.3. Colecta de semilla y material de herbario
32
3.3.4. Extracción de semilla
32
3.4. Fase de laboratorio
3.4.1. Estudio morfológico de la semilla
33
_
33
PAGINA
3.4.2. Anatomía de la testa
33
3.4.3. Ultraestructura de la semilla
33
3.5. Pruebas de germinación
34
3.5.1. Tratamientos
34
3.5.2. Substrato
35
3.5.3. Siembra
35
3.5.4. Porcentaje de germinación
35
3.5.5. Velocidad de germinación
35
3.6. Diseño experimental
4. RESULTADOS
35
37
4.Jí.Fenología de las especies
37
4.2 Morfología de la semilla de las especies estudiadas
46
4.3 Ultraestructura de las semillas
47
4.4 Técnicas de germinación
53
4.4.1 Análisis estadístico para las pruebas de germinación
4.5 Proceso de germinación y desarrollo de las plántulas
58
60
5. DISCUSION
67
6. CONCLUSIONES
74
7. LITERATURA CONSULTADA
77
INDICE DE TABLAS
TABLA
1.
PAGINAS
Valor nutritivo de algunas especies utilizadas en el presente
estudio
2.
Registro de datos climáticos presentes en el área de estudio
durante el desarrollo del trabajo
3.
55
Velocidad de germinación de 9 especies del matorral de zonas
sem ¡áridas de Marín ,N. L.
8.
53
Porcentaje de germinación de 9 especies nativas utilizadas en el
presente estudio
7.
46
Dimensiones promedio de las macro y microesclereidas en la
testa de las semillas estudiadas
6.
31
Características morfológicas de las semillas de 9 especies
estudiadas
5.
30
Lista de especies maderables seleccionadas para los ensayos
morfoanatómicos y de germinación
4.
8
57
Resumen de los análisis de varianza para el porcentaje de
germinación de 9 especies nativas estudiadas bajo un diseño
completamente al azar
9.
59
Pruebas de comparaciones múltiples (Tukey, Zar, 1984) realizadas
sobre los valores medios de germinación en 9 especies nativas
60
INDICE DE FIGURAS
FIGURA
1.
Planta deyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Celtis leavigata (palo blanco) mostrando sus frutos
aún sin madurar
2.
38
Planta de Bumelia celastrina (coma) mostrando sus frutos
completamente maduros.
3.
PAGINA
38
Crecimiento vegetativo y floración de Leucaena leucocehpala
(guaje)
40
4.
Fructificación de Pithecelobium ébano (ébano)
40
5.
Floración de Parkinsonia aculeata (retama)
41
6.
Brotación y floración de Prosopis glandulosa (mezquite)
41
7.
Floración y fructificación de Condalia hookeri (brasil)
42
8.
Brotación y floración de Cordia boissieri (anacahuita)
42
9a.
Fructificación de Acacia famesiana (huizache)
43
9b.
Brotación y floración de Acacia famesiana (huizache)
43
10.
Fenología de las especies estudiadas ( huizache,guaje,retama,
mezquite, ébano, y coma ) en la región semiárida de Marín, N. L.
11.
Fenología de las especies estudiadas( palo blanco anacahuita y
brasil) en la región semiárida de Marín, N. L.
12.
45
Fotografía de microscopio de barrido mostrando un corte transversal
en semilla de guaje
13.
44
48
Fotografía de microscopio de barrido mostrando un corte transversal
en semilla de mezquite
48
FIGURA
14.
PAGINA
Fotografía de microscopio de barrido mostrando un corte transversal
en semilla de retama
15.
Fotografía de microscopio de barrido mostrando un corte transversal
en semilla de ébano
16.
17.
18.
en semilla de huizache
50
Fotografía de microscopio de barrido mostrando las células cotiledonales
de la semilla de coma
52
Fotografía de microscopio de barrido mostrando las células cotiledonales
52
Fotografía de microscopio de barrido mostrando las células cotiledonales
de la semilla de brasil
20.
50
Fotografía de microscopio de barrido mostrando un corte transversal
de la semilla de palo blanco
19.
48
52
Fotografía de microscopio de barrido mostrando las células cotiledonales
de la semilla de anacahuita
52
21.
Plántula de ébano después de 3 semanas de la germinación
65
22.
Plántulas de brasil después de 8 semanas de la germinación
65
23.
Plántulas de coma después de 8 semanas de la germinación
66
24.
Plántula de guaje después de 2 semanas de la germinación
66
RESUMEN zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIH
El estudio ecofísiológíco y técnicas de germinación de nueve especies de
importancia económica de zonas áridas y sem¡áridas fue realizado de marzo a octubre
de 1994 en el municipio de Marín N L. Se seleccionaron las siguientes :yvutsrponmlkihgfed
Cordia
boissieri
(anacahuita),
Condalia
hookeri
(brasil),
Bumelia
celastrina
(coma),
Pithecelobium ébano (ébano), Acacia farnesiana (huizache), Leucaena ieucocephala
(guaje), Prosopis glandulosa (mezquite), Celtis leavigata (palo blanco) y Parkinsonia
aculeata (retama)
Fueron estudiadas las características físicas del área con la ayuda de material
cartográfico editado por INEGI, se registró la fenología de cada una de las especies. En
el laboratorio se realizaron estudios morfológicos y anatómicos de las semillas así como
pruebas de germinación.
^
Los resultados indican que existen especies con alto grado de resistencia al
déficit hídrico como Bumelia celastrina o bien, especies que cuentan con un mecanismo
de alta tolerancia a este factor (afilia temporal) que les permite sobrevivir en los
períodos más críticos como es el caso de Cordia boissieri. El primer evento en la
producción de flores y frutos al inicio del año está en función de las condiciones de
humedad prevalecientes en los meses anteriores. El segundo evento esta condicionado
a las lluvias de ese año así como a las temperaturas bajo cero que se presentan
durante los meses de noviembre y diciembre.
Todas las semillas de las leguminosas son atacadas por elementos del género
Acanthoscelides, las demás sufren daños básicamente por roedores. Las semillas de
todas la especies permanecen varios meses en el suelo recibiendo temperaturas altas
y bajas, ataque de hongos , bacterias, consumo por aves y ganado , todo ello favorece
la germinación en forma natural.
Las observaciones microscópicas revelan cierta similitud en las características
de la testa de las leguminosas, constituidas por una o dos capas de células
(macroesclereidas) arregladas en empalizada muy compactas y con longitudes
bastante grandes.
En relación a la germinación deyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Parkinsonia aculeata el mejor tratamiento fue el
agua caliente a 95 °C(15 minutos), mientras que el ácido sulfúrico durante 20 minutos
resulto ser el mejor tratamiento para Bumelia celastrina, Condalia hookeri , Prosopis
glandulosa, Leucaena leucocephala y Acacia farnesiana . El ácido sulfúrico durante 10
minutos favoreció a Pithecelobium ébano. El agua caliente a 80 °C por 15 minutos fue
el mejor tratamiento para anacahuita, Los tratamientos con remojo y el testigo no
favorecieron a ninguna especie en el proceso de germinación. La velocidad de
germinación más alta para Cordia boissieri se presentó con el agua caliente a 65°C (15
minutos) , en Parkinsonia aculeata el agua caliente a 95°C (10 minutos), Bumelia
celastrina ,Condalia hokerii y Acacia farnesiana con el ácido sulfúrico (20 minutos) ,
Prosopis glandulosa ,Leucaena leucocephala y Pithecelobium ébano con el ácido
sulfúrico con 10 minutos.
1. INTRODUCCION
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPON
Gran parte de la superficie del Noreste de México, especialmente el área
denominada fisiográficamente "llanura del Golfo Norte " donde se localiza la región
centro de Nuevo León, se encuentra cubierta de una vegetación predominantemente
arbustiva y arbórea, compuesta de una amplia variedad de especies y con diversidad
de estructuras y asociaciones.
Esta vegetación se ha desarrollado bajo condiciones difíciles de precipitación,
soportando temperaturas extremas, suelos con poca fertilidad, presencia de sales y
relieve muy irregular. Sin embargo, ha resistido a las - condiciones edafoclimáticas
extremas gracias a las características morfoanatómicas de la vegetación que le han
permitido conservar m§jor el agua (hojas pequeñas, presencia de una gran cantidad de
tricomas, afilia temporal o permanente, presencia de cera o resina en sus tejidos etc.)
Este tipo de vegetación de acuerdo con Rzendowski,(1978) queda comprendido
como matorral mediano espinoso . Las especies que constituyen esta comunidad
vegetal han proporcionado durante muchos años: alimento al hombre, forraje para el
ganado, carbón vegetal, leña y se han utilizado como plantas medicinales y
ornamentales. Esto significa que existe un conocimiento empírico muy amplio sobre la
selección y aprovechamiento de las plantas que le han permitido al habitante de zonas
áridas, satisfacer gran parte sus necesidades con productos naturales durante muchas
generaciones. Sin embargo, el uso indiscriminado en las últimas décadas que se le ha
dado a estos recursos está reduciendo la potencialidad reproductiva y protectora del
mismo, ocasionando con ello cambios desfavorables en el medio ambiente (factores
climáticos y edáficos) de la región, estos cambios traen por consecuencia deterioro no
sólo en la economía de los habitantes sino, también sobre la reducción « inmigración
la fauna silvestre afectada por la falta de alimento disponible producto de la existencia
limitada en la vegetación.
Por lo anterior es necesario preservar aquellos ecosistemas todavía con la
vegetación nativa, mediante la realización de estudios, que permitan conocer mejor la
dinámica poblacional para desarrollar un plan adecuado de aprovechamiento de
especies leñosas en todos los aspectos . Estos estudios permitirán la utilización más
eficientemente de ellas sin causar alteraciones graves como desequilibrio ecológico y la
desertificación de la naturaleza. El conocimiento integral de nuestra vegetación nos
permitirá aumentar la variedad de usos favoreciendo de esta manera, los intereses de
las personas que viven en zonas rurales, así como los que habitan las grandes
ciudades. zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Objetivos
1. Definir los factores físicos y bióticos que intervienen en los procesos de
germinación y establecimiento de plantas en las condiciones edafoclimáticas extremas
de la región centro del estado de Nuevo León.
2. Determinar las características morfológicas y anatómicas de las especies
Hipótesis. zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
Las Características estructurales y fisiológicas de las semillas están relacionadas
con la capacidad germinativa de las mismas, por lo cual se espera que las condiciones
climáticas de la región así como el consumo de semillas por parte de animales
silvestres y el ganado intervengan para que se de el proceso de germinación y
establecimiento de las especies estudiadas.
2. REVISION DE LITERATURA
2.1 .Características general de las especies en estudio
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPON
Las características sobresalientes de las especies en estudio se describen a
continuación. yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Prosopis glandulosa torr.(Leguminosae)
Descripción botánica
Prosopis glandulosa (mezquite) es un arbusto o árbol de 10 m de altura, hojas
bipinadas con un par de pinas, menos frecuente con dos pares, folíolos de 6 -20 pares
por pina de 10 - 62 mm de longitud, glabros. Flor en espigas de color amarillo pálido.
^ Fruto una vaina erecta indehiscente casi cilindrica de 7-20 cm de longitud. (Correll,
1970).
Distribución ecológica
El mezquite presenta un amplio rango de distribución desde el sur de Texas
hasta el sur de la República Mexicana (Martín, 1974) prefiere suelos planos y
profundos con un buen drenaje. En suelos con pendientes pronunciadas y pedregosos
su crecimiento es muy limitado de igual forma el número de individuos por unidad de
superficie. Por lo anterior se piensa que esta planta es indicadora de corrientes
subterráneas.
Usos
La vaina del mezquite es utilizada en la alimentación humana, se consume una
vez que ha llegado a su madurez, se mastica extrayendo el jugo azucarado eliminando
el gabazo. De los frutos maduros y molidos se- obtiene una harina alimenticia y una
bebida agradable . En algunos lugares del estado de Guanajuato preparan una bebida
con los frutos en agua alcoholizada (Martínez, 1959).
Esta planta segrega en el tronco una goma de color ámbar cuyas propiedades físicas y
químicas son parecidas a la de la goma arábiga. Esta sustancia es de consistencia
suave y sabor dulce por lo cual representa una golosina para los niños.
La vaina es muy apreciada sobre todo en lugares donde la precipitación es
escasa, la población rural colecta y almacena las vainas secas para alimentar al
ganado como suplemento en los períodos críticos del año (Goméz, 1970). El mayor
contenido alimenticio se encuentra en las semillas las cuales contienen un 41 % de
proteína (Martínez, 1959).
La goma es usada para hacer gargarismos y contra la disentería. El cocimiento
de las hojas es usado en inflamaciones de los ojos. La corteza o semillas en infusión en
preparación de 5- 6 g en 100 mi de agua, tomada varias veces al día se emplea para
curar irritaciones inflamatorias de tubo digestivo (Martínez, 1959).
En las áreas rurales es muy común cocinar con leña de mezquite ya que
produce una flama muy buena y brazas duraderas. Los tallos verdes son utilizados
para la fabricación de carbón de excelente calidad sobre todo en las áreas cercanas a
las grandes ciudades, creando una fuente de ingresos bastante buena para quien lo
produce.
Dada la gran tolerancia que tiene para soportar la sequía puede ser una
alternativa para evitar pérdidas de suelo por erosión hídrica o eólica. En algunos
lugares de la República, su madera es utilizada para fabricar barricas, trompos,
artesanías, elaboración de carretas mangos para herramienta (Rodríguez, 1988).
Acacia farnesianazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(L) willd. (Leguminosae)
Descripción botánica
Acacia farnesiana (huizache) es un árbol pequeño o arbusto grande de 2 a 4 m
de altura con ramificaciones armadas con espinas rectas en pares que representan las
estípulas de las hojas modificadas. Las hojas son compuestas de 3-8 cm de largo;
pinas de 2 a 6 pares; Los folíolos son numerosos linear-oblonga de 3-5 mm de largo.
Las flores en cabezuelas globosas de 1 cm de diámetro aproximadamente y muy
aromáticas, los pedúnculos son delgados de 1 cm de largo y pubescentes. El fruto es
una vaina encurvada, indehiscente de 3 a 6 cm de longitud casi cilindrica,
adelgazándose en ambos extremos de color negra y lisa, con las vainas coreáceas; las
semillas en dos hileras de cada vaina (Correll ,1970).
Distribución ecológica
Acacia farnesiana presenta una amplia distribución encontrándose en diversas
comunidades vegetales como bosque subcaducifolio, bosque tropical caducifolio,
bosque espinoso y bosque de encino, forma asociaciones principalmente con
Prosopis glanduiosa (mezquite) y Parkinsonia aculeata (retama). En condiciones
difíciles de crecimiento es posible encontrarla junto con Cordia boissierí (Anacahuita) y
Bumelia celastrína (Coma). Prefiere suelos profundos para un buen desarrollo pero en
ocasiones es posible observarlo en pequeños lomeríos en suelos someros y
pobres.(Abuin, 1970) Se distribuye en Tamaulipas, Veracruz, Tabasco, Campeche,
Yucatán, Chiapas, Oaxaca Quintana Roo, Guerrero, Michoacán, Jalisco, Colima,
Nayarit, Sonora, Sinaloa, Hidalgo, Puebla, Morelos, Tlaxcala, Guanajuato, Baja
California y Querétaro (Niembro, 1986).
Usos
La madera del huizache es ligera pero de buena calidad calorífica sobre todo
para cocinar alimentos que requieren flama. La madera es relativamente suave y
regularmente dañada por insectos no obstante es utilizada como estantes para cercas.
Los frutos son consumidos grandemente por el ganado caprino siendo su alimento
preferido y proporcionando nutrientes (Chazaro, 1976) en los períodos críticos del
año.(Martínez, 1959) señala la importancia que tiene la flor de huizache como
productora de aceite esencial para la producción de perfumes.
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNM
Pithecelobium ébano (Berl.) Muller. (Leguminosae)
descripción botánica
El ébano es un árbol hasta 15 m de altura con ramificaciones rígidas y cortas,
armadas con espinas estipulares . La corteza es de color gris pálido en las ramas
jóvenes. los folíolos son de tres a seis pares por pina. Las flores son densas espigas
usualmente de 2-3 cm de largo y dos cm de ancho. El fruto es una legumbre gruesa, de
valvas rígidas, leñosa de 10 - 20 cm de largo y 2 cm de ancho. Las semillas son
grandes aproximadamente de 1 cm de largo, globosas y de color rojo obscuro (Correll,
1970).
Distribución ecológica
Es posible encontrarla en Nuevo León, San Luis Potosí, Veracruz, Campeche y
Yucatán forma parte del bosque caducifolio y bosque espinoso (Niembro, 1986). En
términos generales, el ébano pese a su sobreexplotación todavía se pueden localizar
algunos ejemplares en la zona centro del estado de Nuevo León. En donde se llevó a
cabo la colección y estudios ecofisilógicos, el ébano se localiza en suelos planos y
profundos donde el agua de lluvia se acumula en mayores cantidades, es frecuente
observados cerca de los lugares donde existen corrientes de agua superficiales, es un
árbol siempre verde, el cual sólo las heladas y temperaturas por debajo de 0 °C
ocasionan que sus hojas caigan al suelo.
Usos
Las semillas son consumidas en estado inmaduro cociendo las vainas y
agregándoles sal. Cuando están completamente maduras se colocan en un comal para
tostarlas, de esta forma se suaviza la testa extrayendo los cotiledones con mayor
facilidad. La semilla sin cubierta una vez tostada y molida puede ser usada como
sustituto del café. El valor alimenticio del ébano así como de algunas especies nativas
se muestra en la tabla 1.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Tabla 1 Valor nutritivo de algunas especies utilizadas en el presente estudio
en base a 100 g. (Espino,1985).
Proteína
(g.)
8.18
Grasas (g.)
Calcio (g.)
Ehretia ancacua (anacua)
Porción
comestible %
77.10
2.73
0.641
Condalia hookeri (brasil)
85.60
5.87
2.82
0.340
10.56
3.84
0.090
32.86
20.36
0.083
10.06
10.19
0.611
7.6
10.54
0.851
Frutas
Pithecelobium flexicaule
(ébano) testa
Pitehecelobium flexicaule
(ébano) cotiledones
Prosopis glandulosa
(mezquite)
Vitis sp (uva silvestre)
78.00
yxvutsrqp
La madera es muy fuerte y de gran durabilidad por ello se utiliza como estantes
para cercas. Los tallos se usan como leña y para la elaboración de carbón de excelente
calidad. Ya que el duramen es de un color obscuro y la albura de color amarillo, en
algunas regiones de México se fabrican muebles de buena calidad, dicha madera sirve
también para duela. La sombra que produce esta especie es muy compacta por ello es
utilizada como planta ornamental.
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Leucaena leucocephala Lam. de wit (Leguminosae)
Descripción botánica
Leucaena leucocephala (guaje) es un arbusto o árbol pequeño hasta de 8m de
altura, presenta ramas jóvenes puberulentas. Las hojas son bipinadas con cuatro a
nueve pares de pinas. Los folíolos de 11-17 pares de pinas, oblongos a lanceolados,
asimétricos, ápice agudo de 7-12 mm de largo y de 2-3.5 mm de ancho. Las flores en
cabezuelas de 15 -20 mm de diámetro, de color blanco amarillento .El fruto es una
vaina en forma de cinta, hasta de 20 cm de largo y de 1-2 cm de ancho, estipitada, con
18 a 25 semillas (Correll, 1970).
Distribución ecológica
Forma parte de los bosques tropical subcaducifolio, es una especie que presenta
un rango muy amplio de distribución se encuentra desde el sur de Texas hasta América
del sur dependiendo de la variedad de esta especie (Foroughbakhch y Háuad, 1990).
En México la encontramos en toda la vertiente del golfo desde Tamaulipas hasta
Yucatán y Quintana Roo, también en la vertiente del pacífico desde Sinaloa hasta
Chiapas. (Niembro, 1986).
El guaje no pertenece al tipo de vegetación existente en el área de estudio
(Marín, N. L). de tal manera que regularmente la encontramos en lugares donde fue
eliminada la vegetación, o bien en algunos lotes baldíos, para su buen desarrollo, el
guaje requiere suelos de mediana fertilidad siempre y cuando se acumule el agua de
lluvia, esto nos indica que es una planta que tolera poco la sequía. En comparación con
las especies nativas de la región el guaje es poco resistente a las bajas temperaturas
(heladas) soporta bien temperaturas de 0 °C (Foroughbakhch, 1990). Cuando las
temperaturas bajan a - 2 °C sufre daños considerables a tal grado que muere toda la
parte aérea, recuperándose nuevamente una vez que se elevan las temperaturas.
Usos
De acuerdo con Foroughbakhch, (1990) el guaje es un planta de múltiple uso
tanto como productora de forraje, alimento, ornamental, productora de leña, planta de
sombra en huertas de café y sombra para el ganado. Sin embargo, en el área donde se
llevó a cabo los recorridos de campo se pudo constatar que prácticamente no tiene
ningún uso a excepción de árbol para sombra con sus limitaciones en la época de
invierno. Debido a la presencia de mimosina (1 - 3% de la materia seca) el consumo
excesivo de esta planta como alimento básico puede causar problemas de intoxicación
al ganado no rumiante .(Rock, 1920 citado por Whitesell, 1974, Foroughbakhch y
Háuad, 1990).
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Parkinsonia aculeata L.(Leguminosae)
Descripción botánica
Parkinsonia aculeata (retama) es un árbol pequeño hasta 10 m de altura con
ramificaciones color verde, armadas con espinas ligeramente curvadas que representan
el^ raquis modificado
de las hojas.
Las
hojas son alternas, bipinadas
casi
sésiles, con un par a dos de pinas, elongadas de 10- 30 cm de largo con un raquis
aplanado de color verde. Los folíolos numerosos y pequeños de 2 - 4 mm de longitud.
Las flores en racimos cortos, con simetría ligeramente bilateral, cinco sépalos
separados, cinco pétalos casi iguales amarillos. El fruto es una vaina indehiscente de 5
-10 cm de longitud con constricciones entre las semillas, valvas delgadas de color café
(Correll 1970).
Distribución ecológica
La retama se encuentra en combinación con mezquites y huizaches, requiere
suelos profundos para su buen desarrollo. Sin embargo, es un especie resistente a la
sequía, en algunos estados de la Unión Americana la están utilizando básicamente
para la reforestación en condiciones difíciles de crecimiento y el resultado ha sido
favorable.
Esta especie se distribuye ampliamente en Tamaulipas, Nuevo León, Sonora,
Durango, San Luis Potosí, Guanajuato y Oaxaca, forma parte del bosque tropical
caducifolio (Niembro, 1986).
Usos.
El follaje y los brotes son consumidos por el ganado caprino y vacuno . La
infusión de las hojas es empleada como febrífugo y sudorífico (Rodríguez, 1988). Dado
su aspecto tan llamativo una vez que está en floración es usada como planta
ornamental.
Cordia boisserízyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
A. DC.(Boraginaceae)
Descripción botánica
Cordia boissieri (anacahuita) regularmente es un arbusto o árbol que llegan a
medir hasta 8 m de altura .El tronco puede llegar hasta 20 cm de diámetro. Sus hojas
son gruesas, rígidas, ovadas a ovado - lanceoladas, hasta 20 cm de largo y 15 cm de
ancho con un pecíolo hasta 4 cm de longitud. La base de la hoja es redondeada a
ligeramente cordada, ápice agudo a obtuso; el limbo es escabroso en el haz y
ligeramente tomentoso en el envés. Sus flores crecen en inflorescencias de cima con 6
a 8 regularmente ; tubo del cáliz cilindrico de 8 a 16 mm de largo con lóbulos agudos,
corola en forma de embudo, blanca con la garganta amarilla de 3.5 a 4.5 cm de largo
con lóbulos redondeados, fruto ovoide de 2 a 3 cm de largo, ligeramente café brilloso
de pulpa dulce (Correll 1970).
^
Distribución ecológica
La anacahuita se encuentra en el matorral espinoso en asociación con chaparro
amargoso, coma, mezquite, chaparro prieto, etc. Esta especie crece abundantemente
en las laderas de los cerros donde el suelo es somero y con altos porcentaje de
pedregosidad. Sin embargo, está presente también en suelos profundos con un buen
drenaje y humedad. No obstante, durante las observaciones de campo se apreció que
en este último ambiente el crecimiento es muy vigoroso pero la densidad es baja. La
anacahuita es resistente a sequías prolongadas (Foroughbakhch et al, 1987) es posible
encontrarla en lugares con precipitaciones superiores a 350 mm anuales . Esta especie
deja caer sus hojas en los períodos más críticos evadiendo de esta forma la sequía que
se presenta durante algunos meses.
Usos
Debido a la presencia de varios compuestos químicos tales como ácido gálico,
tanino, goma, resina y oxalato de calcio en la madera de anacahuita, es utilizada como
planta medicinal, con ella se elaboran pastillas pectorales (Martínez, 1959). El follaje y
frutos son consumidos frecuentemente por el ganado caprino, bovino y fauna silvestre
debido a la gran cantidad de pulpa y al elevado número de frutos producidos por planta.
La anacahuita es una fuente importante de alimento para el ganado en el
noreste de México. Su madera además es utilizada como leña a pesar que no es de
buena calidad. Sin embargo, el ambiente donde crece esta especie es tan hostil que no
es fácil encontrar otro fuente de combustible. Dada su flexibilidad en estado verde es
utilizada para mangos de implementos de trabajo. La presencia de flores vistosas
hacen de esta planta una buena alternativa para reforestar plazas y jardines
(Rodríguez 1995), en el área de estudio fue encontrada en los terrenos contiguos a las
casas haciendo combinación con otros elementos. Es una planta melífera, dado que
sus flores grandes y vistosas, presentan grandes cantidades de nectáreos los cuales
son visitados frecuentemente por abejas.
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Condalia hookeri M. C. Johnst (Rhamnaceae)
Descripción botánica
Condalia hookeri (brasil) es un arbusto de 4 - 6 m de altura. Las hojas son
obovadas de 15 - 20 mm de largo y 9-12 mm de ancho. El ápice es mucronado o
redondeado y algunas veces truncado y emarginado o ligeramente agudo con una base
acuminada y un margen entero y de consistencia membranosa. Las flores son verdes,
solitarias o en fascículos casi sésiles. El fruto es una drupa globosa de 5 -6 mm de
diámetro de color azul obscuro, casi negra, de pericarpio carnoso y dulce (Correll,
1970).
Distribución ecológica
Esta especie fue encontrada en asociación con mezquites, huizaches y en
algunas ocasiones con la coma. Prospera bien en suelos profundos ubicados
regularmente en partes planas del matorral mediano subinerme-espinoso, la presencia
escasa de este arbusto hace pensar que las condiciones ecológicas en el área de
estudio no son tan adecuadas para su crecimiento. Se encuentra con más frecuencia
en zonas semiáridas en el matorral tamaulipeco del sur y sureste del estado de Nuevo
León.
Usos
Los pobladores la conocen con el nombre de capul o capulín, hace varias
décadas la consumían como golosina ya que presenta un sabor dulce muy agradable,
su tamaño reducido, menos de 1 cm dificulta su cosecha, además de la poca cantidad
de arbustos existentes. Su madera es muy resistente a pudriciones y al ataque de
insectos, por ello se utiliza para mangos de diversos implementos, así mismo como
leña. yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Bumelia celastrínayvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
H.B.K (Sapotaceae)
Descripción botánica
Bumelia celastrína (coma) es un arbusto o árbol mediano espinoso de 2- 9 m
de altura. Las hojas tienen el pecíolo hasta 1 cm de largo, éstas son generalmente
fascículadas,'excepto en las ramas jóvenes, presentan ápice redondo y base cuneada;
hasta 4 cm de longitud y 2.5 cm de ancho. Las flores se presentan en grupos de 3 a 15,
son pediceladas con una corola de 3- 4.5 mm de largo; ovario piloso en la base; estilo
de 2.5 - 4 mm de longitud. El fruto es elipsoidal a cilindrico de 7 - 1 3 mm de largo, azulobscuro; presenta látex abundante en estado inmaduro (Correll 1970).
Distribución ecológica
De acuerdo con las observaciones efectuadas durante el desarrollo del trabajo en
el campo, hemos constatado que esta especie regularmente crece en las condiciones
más extremas como son; suelos poco fértiles (blanquecinos, pedregosos) y con poca
humedad, bajo estas condiciones crecen achaparrados, muchas veces no sobrepasando
los 2 m de altura .Sin embargo, se han observado algunos árboles creciendo en suelos
profundos con mayor tamaño de frutos y hojas .
Usos
Los frutos son muy dulces por tal motivo durante muchos años sirvió de golosina
en el área de estudio. Actualmente los jóvenes menores de 20 años no las conocen y
sólo se consumen exporádicamente por los adultos. Un inconveniente que presenta es
la presencia de un látex que ocasiona daños al paladar cuando se comen en gran
cantidad. Con la pulpa de varios frutos se puede elaborar una masa para utilizarse como
chicle.
Rodríguez, (1993) elaboró jarabe y mermelada de frutas señalando que bajo esa
presentación tiene propiedades aptas para el consumo humano sin ningún problema.
Debido a su alta resistencia para soportar factores adversos se puede utilizar como
planta de ornato o bien en la reforestación de áreas dañadas.
Celtis leavigatazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
Willd. (Ulmaceae)
Descripción botánica
Celtis leavigata (palo blanco) es un árbol hasta de 15 m de altura en
condiciones favorables de suelo y clima . La corteza de color gris claro, lisa o cubierta
con verrugas suberosas, las ramas jóvenes pubescentes, haciéndose glabras con la
edad. Las hojas son de 4-10 cm de largo y de 1.5-4.5 cm de ancho, de forma
t
lanceolada a oblonga, algunas veces ovado- lanceoladas, delgadas membranosas y
coreáceas, de color verde pálido con nervaduras evidentes; de margen entero a
aserrado, el ápice es largo acuminado y a menudo curvo en la punta; pecíolos de 6-10
mm de longitud. El fruto es una drupa subesférica de 5 a 8 mm de diámetro, de color
rojizo, con pedicelos de 6 - 1 5 mm de largo (Correll 1970).
Distribución ecológica
El palo blanco se localiza regularmente en lugares donde se acumula el agua, es
común encontrarlo en las orillas de los arroyos. En condiciones de humedad baja no
prospera adecuadamente, no es muy exigente en cuanto a fertilidad del suelo.
Usos
Debido a su amplia cobertura de follaje es usado como árbol de sombra. Su
madera fue utilizada en el pasado para elaborar yugos y carretas, el fruto es comestible
pero presenta una cantidad muy pequeña de pulpa.
2.2 Antecedentes sobre el Proceso de germinación de las semillas
zyxwvutsrqponmlk
La germinación puede considerarse como la reanudación del crecimiento del
embrión y termina al aparecer la radícula al exterior de la cubierta seminal. El inicio de
la germinación es la absorción de agua (imbibición ) con este proceso se restablece el
sistema vacuolar y se inicia la actividad hormonal la cual traerá por consecuencia la
producción de enzimas que a su vez permitirán el movimiento de reservas alimenticias
al embrión. En el caso de algunos cereales como cebada, arroz, el embrión empieza a
liberar giberelina y otras hormonas las cuales activan la acción de hidrolasas (amilasa,
lipasa proteasa y nucleasa) éstas son sintetizadas en una capa de células llamada
aleurona. Las reservas para el embrión están localizadas en el endospermo o en los
cotiledones en forma de polisacaridos de alto peso molecular (almidón) y lípidos
complejos (triglicéridos) reduciéndolos dichas enzima a formas más simples: azúcares,
aminoácidos, nucleótidos, glicerol y ácido graso. Estas sustancias serán utilizadas por
el embrión y de esta forma el número y tamaño de las células aumentará permitiendo la
salida de la radícula primeramente y después el vástago aéreo iniciándose la
fotosíntesis y elaborando su propio alimento (Córdoba, 1976).
2.2.1 Condiciones necesarias para el proceso de germinación
Una semilla sin dormancia podrá germinar siempre y cuando existan las
siguientes condiciones: 1) humedad adecuada, 2) temperatura favorable, 3) adecuado
intercambio de gases y 4) luz para algunas especies. Existe una interdependencia
entre estos factores ambientales y su influencia relativa en la germinación, intervienen
también la edad de la semilla y composición genética de la misma (Mayer, 1977 citado
por Maiti,( 1993).
Humedad zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
El agua es un factor importante en
los procesos bioquímicos, favorece la
entrada de oxígeno, así mismo suaviza las cubiertas permitiendo que la radícula y
epicotilo emerjan con mayor facilidad. Durante el proceso de imbibición existen otros
factores los cuales intervienen en la absorción de agua por parte de la semilla, la
temperatura es considerado el segundo factor importante en la germinación ya que
está comprobado que las temperaturas elevadas facilitan la absorción mucho más
rápida del agua y gases (Sánchez, 1994).
Temperatura
Las semillas difieren en la temperatura que necesitan para germinar, y muchas lo
hacen dentro de un rango muy amplio. El limite inferior es 0 °C y el superior 45 °C en
términos generales para plantas cultivadas, este limite es todavía más amplio ¿ara las
plantas silvestres. El porcentaje de germinación disminuye a temperaturas muy
elevadas y muy bajas. Para la mayoría de las plantas cultivadas la temperatura óptima
es entre 20 a 30 °C, pero para otras especies como el trigo y cebada, germinan
fácilmente a 10 °C. Como ejemplo la temperatura óptima parayxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNML
Sida cordifolia es de 30
a 35 °C en la obscuridad. Sin embargo, éste rango se modifica en condiciones de luz
de 15 a 25 °C. (Cardoso, 1991).
La semillas de algunas especies requieren temperaturas alternas, sucede en
Solanum americanum la cual requiere temperaturas de 20 °C durante el día y 30 °C
durante la noche para su germinación.(Barros,1993)
Oxígeno
Las semillas requieren suministro de oxígeno para soportar la alta velocidad de
respiración en el proceso de germinación, si el agua está presente en grandes
cantidades en el suelo, el oxígeno se reduce ocasionando que las semillas se pudran
fácilmente, al contrario existen plantas que están adaptadas a lugares húmedos, como:
yxvutsrq
Nuphar luíeum Sibth.et S.M. (Sadowska, 1991) la cual germina en el agua y en
completa obscuridad, De acuerdo con Menegues, (1992) la especie Trepa natans tiene
la capacidad de germinar en completa anoxia. El porcentaje de oxígeno inferior al 15%
redujó la germinación considerablemente en Valeriana olitoria de acuerdo con
Corbineau, (1990)
En algunas ocasiones la presencia del oxígeno afecta la respuesta que puede
tener la semilla a otros factores, tal es el caso de Amaranthus caudatus L., donde la
luz tiene efectos favorables en la germinación siempre y cuando existan porcentaje
elevados de oxígeno (Carpenter, 1991).
La falta de oxígeno puede causar dormancia secundaría en semillas de
Tragopogon pratensis y T. dubius (Qi, 1993)
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCB
Luz
Existen semillas que aún que tengan cantidades adecuadas de todos los
factores necesarios para la germinación, no germinan debido a su imperiosa necesidad
de luz, esto se debe a que las semillas contienen diminutas cantidades de un pigmento
protéico sensible a la luz llamado fitocromo, que permite la germinación después de
una breve exposición a luz roja. La existencia de un fotoreceptor en la plantas fue
propuesta por Garner y Allard 1929 (citado por Córdoba, 1976). Sin embargo, un
estudio más completo fue abordado por Borthwick et a L (1952) al señalar que semillas
de lechuga var. grand rapids sometidas a un período de imbibición durante 12 horas
presentaban 82 % de germinación si se exponían a luz roja. La germinación se ve
favorecida con luz monocromática de 600 nm. El mayor rendimiento se logró con 660
nm, con valores superiores a esta longitud de onda. Borthwick et aK¿ (1952) han
demostrado que en las semillas expuestas a una longitud de onda de 730 nm, se
produce un efecto inhibidor. Estos hechos condujeron a la hipótesis de un pigmento
fotoreceptor que por absorción de luz roja se transformaba .En la actualidad,zyxvutsrqponmlkjihgf
p r s e le
conoce al fitocromo que presenta su máxima absorción en el rojo del espectro a 660
nm y pfr al fitocromo que presenta su máxima absorción a 730 nm en la zona infrarroja
del espectro.
La respuesta de la germinación a la luz es de tres tipos i) mejora bajo
condiciones de luz continua, ii) mejora bajo breves momentos de iluminación iii) es
indiferente a la presencia o ausencia de luz.
La germinación de algunas especies mejora con luz continua como;yxvutsrqponmlkjihgfedcb
Vaccinium
myrtiUus (Giba, 1993), Pierís floribunda (Starrett, 1992), Nigella
damascena
(Rudnicki, 1991). Es importante señalar que la longitud de onda más adecuada para
promover la germinación es de 650 nm (Luz roja), de acuerdo con MacDonald (1992),
Rudnicki (1991) y Bell (1993). Sin embargo, en algunas ocasiones se obtienen buenos
resultados con exposiciones a luz y obscuridad como sucede con varías especies del
genero Meconopsis (Sulaiman, 1994).
2.3 Proceso del letargo
El letargo es un término usado para señalar la inactividad de la planta o semilla,
existen dos situaciones causantes de este proceso, a) el crecimiento puede detenerse
por condiciones externas como la temperatura o la falta de agua, b) por factores
internos que impiden el crecimiento aún que existan las condiciones ambientales
favorables. Cuando se debe a condiciones externas es denominado quiescencia, si
intervienen factores internos es llamado reposo (Samish, 1954). La intensidad y
duración del letargo varía con el grado de madurez de las semillas y almacenamiento,
pero sobre todo es una característica genética de la especie.
La maduración de la semilla incluye el desarrollo de mecanismos internos de
letargo que controlan la germinación (Amen, 1968). La función de estos controles es
preservar las semillas y regular la germinación de manera que coincida con las
estaciones del año, donde se presentan condiciones favorables para la sobrevivencia de
la plántula (Mahlstede, 1957).
Este último mecanismo es muy importante para especies que crecen en lugares
donde ocurren condiciones ambientales extremas (temperaturas frías y escasa
precipitación) como las regiones frías y los desiertos. La domesticación de las especies
y posteriormente su mejoramiento genético ha permitido que la mayoría de las plantas
actualmente cultivadas no presenten esta característica, benéfica muchas veces para el
hombre, pero desfavorable para las especies.
El hecho de que semillas^parentemente maduras no germinen se debe a un
número grande de factores o combinación de ellos. Amen, (1968) señala que las causas
principales del letargo son:
a. Embriones rudimentarios
b. Embriones fisiológicamente inmaduros
c. Cubiertas e integumentos de semillas mecánicamente resistentes
d. Cubiertas impermeables
e. Presencia de inhibidores de la germinación
En muchas especies arbóreas los embriones de las semillas están completamente
desarrollados al desprenderse. Sin embargo, esto no significa el éxito de la germinación,
estas semillas germinan sólo al cabo de un período de postmaduración. En forma
natural lo realizan durante el período de bajas temperaturas de invierno. Durante el
período de descanso, en las semillas se producen cambios fisiológicos en los embriones
y se estimula la germinación (Amen, 1968)
Las semillas de la mayoría de las leguminosas tienen cubiertas o testa tan
resistente que los embriones no pueden extenderse y desarrollarse. En forma natural la
fuerza estructural de estas cubiertas se rompe por congelación, deshielo, lixiviación,
paso por el ducto digestivo de los animales (Varner, 1961). En forma artificial esta
barrera puede ser eliminada por escarificación o tratamientos que suavicen las cubiertas
de las semillas.
La presencia de inhibidores en los tejidos de los frutos impide la germinación de
algunas semillas. La interacción de los inhibidores y las sustancias promotoras del
crecimiento es una de las etapas del proceso que determina el establecimiento y
terminación del reposo (Weaver, 1975).
El reposo de las semillas de ^cuerdo con Amen, (1968) puede ser dividido en
cuatro fases;
a. Inducción; Caracterizada por una disminución en los niveles
hormonales
b. Mantenimiento; Considerado como un período de detención metabólicaparcial
c. Desencadenamiento ; Las semillas son especialmente sensibles a
las
condiciones ambientales
d. Germinación; Aumento en la actividad hormonal y enzimàtica seguido del
crecimiento del eje embrionario latente ( en general el agente real de la
germinación es una hormona ) la acción de este mecanismo se determina
según el tipo de hormona o sus concentraciones.
2.3.1 Tipos de letargo
Letargo físico
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
Este tipo de letargo es proporcionado a la semilla básicamente por la presencia
de una testa dura e impermeable al agua (Rolston, 1978). Generalmente el embrión
está quiescente pero protegido de tal manera que en forma natural pueden pasar
meses incluso años sin que se aumente el contenido de humedad internamente, lo cual
evitará la germinación. Esta forma de letargo es común en especies de la familia :
Leguminosas,
Malvaceas,
Chonopodiaceas,
Convolvuláceas
y
Solanaceas
(Hartman,1989).
Las semillas con este tipo de dormancia adquieren la impermeabilidad al final de
la maduración y durante la desecación. Si se cosech|n las semillas antes de alcanzar
su completa madurez es posible lograr la germinación. La maduración resulta en un
encogimiento que compacta las células de macroesclerenquima presionándolas
fuertemente unas con otras. La germinación en forma natural es posible debido a
cambios en la temperatura, daño por insectos, o el paso por el tubo digestivo de aves
roedores o algunos otros mamíferos.
Letargo químico
En este caso el proceso de germinación no se desarrolla debido a la presencia
de sustancias inhibidoras, como ; compuestos fenólicos, cuamarina, ácido abscísico,
ácido cinámico, ácido cianhídrico, etc. Estos inhibidores se acumulan en diversas
partes de las plantas como frutos, cubiertas de las semillas, etc. Algunos frutos
carnosos como cítricos, cucúrbitas, manzanas, peras, uvas y tomates producen
sustancias que inhiben la germinación de las semillas (Hartman, 1989).
yvutsrpo
Para lograr la germinación de semillas con letargo químico es necesario remover
los inhibidores, esto en forma natural, es posible cuando la testa o la parte de la semilla
que contiene los productos es consumida o dañada por animales. Las semillas tratadas
por los animales y expuesta a condiciones favorables (lluvia) pierden los productos
químicos inhibidores. Camacho,(1994) señala que el pirulyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Shinus molle presenta letargo
químico y que el simple remojo por un día permite la germinación en un 100 % .Cuando
las semillas están expuestas a temperaturas elevadas dichos productos pueden
también ser removidos.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Letargo fisiológico
Existen diversas opiniones para explicar este tipo de letargo algunos autores
(Hyde, 1956) señalan que el letargo tiene sus orígenes en las cubiertas vivas y
fisiológicamente activas de las semillas, que permiten la entrada de agua pero que
restringen los movimientos de gases (entrada de oxígeno y salida de bióxido de
carbono) de igual forma se impiden la lixiviación de inhibidores en caso de que los
hubiera.
Letargo morfológico
Se refiere
a que el crecimiento del embrión no
se ha
desarrollado
completamente, por ello las semillas maduras presentan embriones rudimentarios. El
crecimiento y desarrollo de los embriones se realiza después que las semillas se han
dispersado. El tiempo para completar su desarrollo depende de las características
morfoanatómicas y el comportamiento de las especies en estudio y condiciones
ecológicas de la zona, para algunas especies tales como guaje, huizache uña de gato,
son suficiente varios días para completar el proceso de germinación mientras que en
otras comoyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Anona sqacoda y Elaeis quinensis se requiere varios meses (Nikolaeva,
1969).
En algunas ocasiones intervienen también la presencia de inhibidores, la
aplicación de giberelinas estimula el proceso de germinación (Weaver, 1975).
zyxvutsrqponmlkjih
2.3.2 Métodos para el rompimiento del letargo
La dormancia de la semilla ha sido un tema muy estudiado por una gran
cantidad de científicos en todo el mundo. Se han desarrollado trabajos para romper el
letargo con un sin número de tratamientos. A continuación señalaremos algunos
tratamientos los cuales se refieren a especies domesticadas y silvestres de importancia
económica.
Escarificación. El principio consiste en hacer una ruptura en la testa de la
semilla para permitir la entrada de agua. Existe una gran variación de métodos de
escarificación (Foroughbakhch ,1989) algunos mecánicos otros manuales pero todos
ellos cumplen el mismo principio. La escarificación de la semilla regularmente es
utilizado para especies con letargo físico.
Inmersión en agua caliente. Consiste en colocar las semillas en recipientes con
agua a temperaturas de 77 a 100 °C (Hartman, 1989) inmediatamente debe retirarse la
fuente de calor dejando las semillas en el agua caliente dependiendo del tiempo
necesario y de la especie en cuestión. Corral, (1990) realizó un trabajo con 4 especies
del
géneroyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Cistus para romper el letargo utilizando
el agua caliente a
100 °C durante 30 minutos aplicando remojo en agua destilada, ácido giberélico y
tratamiento con luz.
El rompimiento del letargo se vio favorecido con los dos primeros, (remojo en agua
destilada y ácido giberélico).
Passos (1988) experimentó con seis tratamientos para favorecer la germinación
deyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Leucaena teucocephala, estos fueron; a) control, b) inmersión en agua a 100 °C
por 2 segundos, c) inmersión en agua caliente 100 °C por 4 segundos, d ) inmersión en
ácido sulfúrico 95% por 2 minutos, e) inmersión en ácido sulfúrico por 5 minutos y f)
semillas golpeadas en la superficie de una mesa. Después de 13 días, los porcentajes
de germinación fueron 73,76,82,98,99 y 64 respectivamente para los tratamientos
mencionados.
Escarificación con ácidos. Son utilizados diversos tipos y concentraciones de
ácidos sin embargo, el que ha mostrado resultados favorables para la mayoría de las
«
especies es el ácido sulfúrico concentrado. El tiempo del tratamiento varía de unos
pocos minutos a varias horas, después del tratamiento es recomendable layar las
semillas muy bien para eliminar todo el ácido. Se sugiere utilizar bicarbonato de sodio
para eliminar residuos del ácido.
Pharande, (1990) en sus estudios sobre el mezquite (Prosopis julíflora y
Prosopis glandulosa) proporcionó los siguientes tratamientos para aumentar la
germinación de estas especies, reporta mejores resultados con el ácido sulfúrico
durante 10 minutos comparado con ácido clorhídrico y hidróxido de sodio, además
señala que la germinación se dio con alto vigor. Jayakumar (1989), trabajo con Cassia
sericea, una especie que presenta menos del 10 % de germinación después de ser
cosechada aplicó nitrato de potasio, benzyladanina y ethephon sin resultados
favorables, en cambio ácido sulfúrico concentrado con 12- 21 minutos mostró 100% de
germinación. zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Tratamientos térmicos a temperaturas elevadas. Es recomendable en el caso
de semillas con testa muy dura, las cuales se ven modificadas por temperaturas
elevadas, en forma natural
es posible observar este tratamiento después de un
incendio en una área con gran vegetación.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Tratamientos térmicos a temperaturas bajas. Consiste en un período de
enfriamiento en húmedo para estimular la maduración del embrión. La temperatura más
común es de 0 a 10 °C. El tiempo necesario de este tratamiento depende de la especie,
Bonner, (1974) sugiere un rango de 1 a 4 meses. En un trabajo realizado para romper
el letargo enyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Impatíens glandlifera se obtuvieron buenos resultados con temperatura
de 4 °C (Mumford, 1990 ).
Estratificación a la intemperie. Consiste en aprovechar las temperaturas frías
que se presentan durante la época de invierno, cuidadando que las semillas no reciban
temperaturas debajo de los 0 °C o bien sean consumidas por los animales.
Lixiviación. El principio se basa en remover los inhibidores que se encuentra en
la superficie o interior de la semilla, puede efectuarse con remojo o bien en agua
corriente. La lixiviación es utilizada en semillas con letargo químico básicamente.
Cosecha de frutos inmaduros. Como fue señalado anteriormente, las semillas
conforme se van madurando, las esclereidas de la testa se van apretando hasta formar
una testa impermeable, por ello este método puede funcionar ya que no se da
oportunidad a que se realice dicho proceso.
Combinación de tratamientos. En muchas ocasiones una semilla presenta
varios tipos de letargo, por ello es recomendable la combinación de tratamientos
primero se recomienda suavizar la testa (por algún tratamiento de los ya señalados) y
posteriormente podrá aplicarse un período de enfriamiento.
Keogh, (1992) utilizo ácido sulfúrico al 98% durante 24 minutos seguido con ácido
giberélico 10 - 4M para romper el letargo enyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Discaria toumatou, observando también
aumento en la velocidad de germinación.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Exposición a la luz. Existen especies que sus semillas requieren luz para iniciar
la germinación, tal es el caso de algunas cactáceas y girasol (Maití, 1994).
Congelamiento. Consiste en someter a las semillas a temperaturas por debajo
de los 0 °C regularmente en seco, es usado para letargo físico (Rolston, 1978).
Disolventes orgánicos. Consiste en la inmersión de las semillas en sustancias
como acetona, metanol, etanol, xileno, etc. Este tratamiento se usa para semillas con
letargo físico. (Doran, 1983).
Alternancia diurna de la temperatura. Regularmente se recomienda 15 a 30 °C
manteniendo las semillas a temperaturas más bajas durante 16 horas y la más alta a 8
horas, con estos cambios, es posible estimular la germinación en algunas especies
(Hartman, 1989).
Aplicación de hormonas. Las más utilizadas han sido giberelinas, citokininas y
etileno. Estas son sustancias que las mismas plantas sintetizan en sus diversas tejidos.
Para el caso de las primeras el GA3 es la sustancia más empleada para rompimiento de
letargo de una gran cantidad de semillas (Fulbright,
1986),
recomendándose
concentraciones muy variadas dependiendo de la especie que se trate. Estas sustancias
son usadas para promover la germinación cuando existe letargo fisiológico.
Benvenuti, (1991). efectúo pruebaszyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
de rompimiento de letargo en cinco especies
del generoyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Heliantus. Las pruebas fueron ; a) temperatura de 5 °C, b) escarificación +
5 °C, c) ácido, giberélico (GA3) 100 ppm, d) 5 °C + GA3 (100 ppm), este último fue el
que mostró mejores resultados. Por su parte Montero, (1990) trabajó con cuatro
cultivares de una planta ornamental conocida en México como perritos (Antirrhinum
majus), el reporta porcentajes de germinación altos con diversas concentraciones de
ácido giberélico. Satjadipura, (1988), utilizó 1000, 1500, y 2000 ppm de GA3 para
promover la germinación en patata, obteniendo los mejores resultados con el
tratamiento a 1000 ppm. con 70% de germinación. Este mismo tratamiento mas 1 ppm
de mixtalol
incrementó la germinación a 82%. KeeganT (1989) en pruebas de
germinación con Recinodendron rautanenii utilizó un producto comercial llamado
ethephon el cual libera etileno con buenos resultados.
Almacenamiento en seco . Consiste en almacenar las semillas durante varios
meses en lugares donde la humedad relativa es baja, se considera que los posibles
inhibidores de la semilla se volatilizan o se inactivan permitiendo así la germinación. Se
usa usada para romper el letargo fisiológico ( Ginzo, 1980).
3. MATERIALES Y METODOS
3.1 Ubicación y características del área de estudio
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQ
Las actividades de campo se llevaron a en zonas semiárídas del municipio de
Marín, N. L. sus coordenadas son 25° 53 latitud norte y 100° 03longitud oeste con 367
m.s.n.m.
El clima de la región, según la clasificación de Kdppen modificada por García,
(1973) para México es de tipo semiárido BS-j (h>) hx(e<). Las condiciones ambientales
de precipitación y temperatura registradas durante el desarrollo del estudio aparecen en
la tabla (2). Las heladas tempranas suelen presentarse después de la segunda semana
de noviembre y las tardías regularmente en enero, hasta el mes de marzo.
Tabla 2 Registro de datos climatológicos presentes en el área de estudio
durante el desarrollo del trabajo
Mes
Enero
Febrero
Marzo
Abril
Mayo
Junio
Julio
Agosto
Septiembre
T.media del T.media max. T.media min. PP.total en
mes en °C
en °C
en °C
mm
13.5
20.0
7.0
87.0
15.5
24.7
22.0
9.0
33.0
21.0
12.0
17.5
30.6
15.8
10.5
23.2
27.0
33.0
21.0
17.3
23.0
45.4
31.0
39.0
39.0
24.0
71.0
31.5
37.0
22.0
38.0
29.5
33.0
20.0
26.5
30.4
T. = temperatura, PP. = Precipitación pluvial, Evap. = Evaporación
Evap. total
en mm
85.67
81.54
211.18
199.84
211.18
244.94
294.30
255.35
169.89
Los suelos de la región de acuerdo con las cartas edafológicas editadas por
DGETENAL, (1977) son de tipo feosem calcáricos, con textura de tipo arcillosa y pH
alcalino. El grado de erosión en el suelo es alto en algunas áreas sobre todo por la
eliminación de la cubierta vegetal por el sobrepastoreo, el abuso en el corte de leña, y
desmontes.
La topografía del lugar esta constituida básicamente por áreas planas y
pequeños lomeríos donde predominan suelos someros.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJI
3.2. Especies estudiadas
La mayoría de las especies seleccionadas son árboles o arbustos de importancia
económica en las regiones áridas y semiáridas del noreste de México (Tabla 3)
Tabla 3. Lista de especies maderables seleccionadas para los ensayos
morfoanatómicos y de germinación
Nombre científico
Nombre común
Familia
1.yvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Cordia boissieri A. DC.
anacahuita
Boraginaceae
2. Condalia hookeri M.C Johnst.
brasil
Rhamnaceae
3. Bumelia celastrina H.B.K.
coma
Sapotaceae
4. Pithece/obium ébano ( Berl.) Muller.
ébano
Leguminosae
5. Acacia farnesiana ( L.) Willd.
huizache
Legummosae
6. Leucaena leucocephaia ( Lam.) de Wit.
guaje
Leguminosae
7. Prosopis glandulosa Torr.
mezquite
Leguminosae
8. Celtis leavigata Willd.
palo blanco
Ulmaceae
9. Parkinsonia aculeata L.
retama
Leguminosae
3.3. Fase de campo
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
Esta actividad tuvo una duración de nueve meses y comprende las siguientes
etapas.
3.3.1 Estudio ecológico. La información sobre el reconocimiento del área de
estudio fue obtenida efectuando recorridos de campo paralelamente realizando la
revisión de literatura, como el material cartográfico editado por DGETENAL actualmente
Instituto Nacional de Estadística y Geografía (INEGI) que ofrece información muy
valiosa. Se hicieron registros sobre las características físicas y químicas del suelo,
relieve, plagas de importancia, porte de las especies , período de heladas,
temperaturas (máximas y mínimas), así como de las lluvias presentes durante el
estudio.
3.3.2. Estudio fenològico. Se recorrió el área de estudio semanalmente y se
registraron las diferentes etapas fenológicas de las especies en cuestión, durante un
período vegetativo, basado sobre el conjunto de las especies como una población y no
a nivel de plantas como individuos.
3.3.3. Colecta de semilla y material de herbario. Cuando los frutos ya estaban
completamente maduros, se seleccionaron aquellos que no presentaran daños por
insectos o enfermedades. Para el caso particular de anacahuita, la semilla fue
colectada de un corral de cabras dado que al momento de hacer los trabajos de
germinación no había en las plantas. El material de herbario colectado fue llevado al
laboratorio de Botánica de la Facultad de Agronomía para su identificación.
3.3.4. Extracción de la semilla. Para el caso del mezquite fue necesario
remojar las vainas en el agua durante cuatro días, esto permitió suavizar la carnosidad
del fruto, posteriormente efectuamos una maceracíón manual, y se pusieron a secar.
De la semilla se removió la cubierta coreacea para conocer si estaba infestada. Para el
huizache y ébano los frutos fueron golpeados con un martillo, de esta manera las
semillas quedaron expuestas. En el caso de coma, brasil, y palo blanco los frutos se
colocaron en agua y se efectúo la maceración manual inmediatamente. Para retama,
solamente se frotaron con las palmas de las manos y liberaron la cubierta delgada que
los envuelve.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
3.4. Fase de laboratorio
3.4.1. Estudio Morfológico de la semilla. Del conjunto de semillas se extrajo
una muestra de 50 semillas a las cuales se les determinaron sus dimensiones; largo,
ancho y grueso, así como forma, coloración y peso, para ello utili^mos una balanza
granataria y el micrómetro.
3.4.2. Anatomía de la testa. Para este aspecto fue utilizada la técnica de
Johansen, (1940) la cual consistió en remover la testa y tejido del endocarpio de cada
una de las especies , se colocaron en tubos de ensaye, agregamos 10 mi de ácido
nítrico y se llevo a fuego en baño maría por 3 horas, posteriormente el tejido se lavó en
tres ocasiones para eliminar los residuos del ácido. Una porción pequeña de este se
colocó en el porta objetos agregándole un gota de glicerina y otra de safranina
inmediatamente después se puso el cubre objetos para observarlo al microscopio
óptico donde se hicieronzyutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLJIGFEDCBA
2 5 medidas de la forma de macro y microesclereidas.
3.4.3. Ultraestructura de la semilla. Se hicieron cortes transversales de
semillas de cada especie, fueron colocados en soportes de aluminio, utilizando cinta de
doble superficie adhesiva, se les agrego pintura conductora de plata coloidal.
El material fue colocado en un cubridor iónico balters donde se cubrió con una película
de oro 100 %. Posteriormente estas muestras se observaron en un microscopio
electrónico de barrido ISI Mini Sem -s a un voltaje de aceleración de 15 Kv. Las
fotografías fueron tomadas con los siguientes aumentos : 100, 200, 400, 700, y 1000
utilizando una película Kodak 664.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
3.5. Pruebas de germinación
3.5.1 Tratamientos. En base a la revisión de literatura efectuada se decidió
utilizar los siguientes tratamientos suponiendo éxito con los mismos.
1. Agua caliente a 65 °C durante 15 minutos.
2. Agua caliente a 80 °C durante 15 minutos.
3. Agua caliente a 95 °C durante 15 minutos.
4. Agua caliente a 65 °C durante 10 minutos.
5. Agua caliente a 80 °C durante 10 minutos.
6. Agua caliente a 95 °C durante 10 minutos.
7. Acido sulfúrico concentrado durante 10 minutos.
8. Acido sulfúrico concentrado durante 20 minutos.
9 Remojo en agua durante 72 horas
10 testigo (semilla sin tratar)
Para los tratamientos en agua caliente, se colocó agua en un vaso de
precipitado, después se llevó al fuego y cuando el agua se encontraba a la temperatura
deseada, depositábamos las semillas durante el tiempo previamente definido. Para los
tratamientos con ácido sulfúrico, este se colocó en un vaso de precipitado, en cantidad
suficiente para que todas las semillas permanecieran en contacto con la sustancia,
dado que la reacción ocasionaba la adherencia de semillas en las paredes del vaso,
fue necesario agitarlo, transcurrido el tiempo del tratamiento el ácido era depositado en
un recipiente y procedíamos a lavar las semillas.
3.5.2. Sustrato. Se utilizó un producto comercial llamado agrogel el cual al
contacto con el agua se transforma en una gelatina transparente, para impedir el
crecimiento de hongos y bacterias aplicamos al gel benlate y cobrezate ( 3 g por litro de
agua) previamente diluido en agua.
3.5.3. Siembra. En cajas de petri se colocó el gel y posteriormente las semillas,
las cajas se colocaron en una estufa donde permanecieron a una temperatura de 30 °C
± 2 °C.
3.5.4. Porcentaje de germinación. Se ^ntabilizó el número de semillas
germinadas, considerando este proceso una vez que se pudiera observar el
crecimiento de la radícula y las hojas cotiledonales.
3.5.5. Velocidad de germinación. Para obtener esta variable se registro el
tiempo transcurrido desde la siembra hasta la germinación de las semillas de cada
especie. Para ello se utilizó la fórmula de Maguire, ( 1962 ) la cual se presenta a zyxvutsrqponmlkji
continuación
No.zyutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLJIGFEDCBA
de p l á n t u l a s normales
No. de p l á n t u l a s normales
Días a l primpr ponteo
Días a l ultimo oonteo
3.6. Diseño del experimento
Bajo diseño experimental solo se condujeron las pruebas de germinación de las
semillas. Dadas las características de homogeneidad del ambiente donde se llevó a
cabo la germinación de semillas se utilizó un
completamente al azar con cuatro
repeticiones. La unidad experimental fue una caja petri que contenía 15 semillas. Los
datos de las pruebas de germinación se analizaron en el paquete estadístico elaborado
por Olivares, (1994).
Las datos del estudio anatómico y morfológico se agruparon en forma ordenada
para determinar el promedio en el paquete de computo excel.
4. RESULTADOS
4.1 Fenología de las especies estudiadas
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHG
Las etapas fenológicas registradas durante este estudio fueron: estado vegetativo
(brotación), floración y fructificación. En general todas las especies inician la brotación a
mediados del mes de febrero, esta
información coincide con los
resultados
proporcionados por Rodríguez, (1993) .La actividad continúa durante los siguientes
meses hasta el mes de mayo o junio, para algunas especies, durante esta época se
presenta un receso en la actividad vegetativa causado por las altas temperaturas y
ausencia de lluvias.
Las especies; guaje, palo blanco (Fig. 1) y la coma (Fig. 2) son las únicas que
reducen la tasa de crecimiento en el período vegetativo pero no la suspenden como las
demás . La brotación se presenta nuevamente una vez que inicia el período de lluvias
(julio o agosto) y se prolonga hasta la segunda o tercer semana de noviembre una vez
que las temperaturas empiezan a reducirse en comparación al período de sequía de
mayo y junio. El receso del estado vegetativo en el período crítico del año se debe a un
déficit hidrico derivado de la muy escasa precipitación y la alta temperatura. La alta
evaporación y consiguiente transpiración de los vegetales en proceso de desarrollo,
afecta los tejidos tiernos deshidratándolos y provocándoles el secamiento de brotes
apicales y ramas nuevas. Con las primeras lluvias de fin de verano se produce la
recuperación de crecimiento hasta el término del período vegetativo. Esta explicación
podría permitir comprender por que no crecen estas especies entre julio y agosto y el
posterior desarrollo en altura. Junto con el receso vegetativo (en invierno) y pérdida de
follaje en algunas especies, se producen las heladas que dañan los tejidos los cuales
inician un rápido crecimiento, favorecidas por las adecuadas condiciones de humedad
Figura 1.yvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Ceftís leavigata (p. blanco) mostrando sus frutos aún sin madurar
Figura 2. Bumelia cefaslñna (coma) mostrando frutos completamente maduros
en el período de lluvias. Las ramas no afectadas por las bajas temperaturas crecerán
favorablemente al inicio del período vegetativo con el desarrollo de nuevos brotes.
La floración de casi todas las especies (Fig. 3 - 9) se presenta en dos ocasiones
durante el año, o bien en un solo evento el cual puede durar varios meses. El huizache
(ver Fig. 9a y b) solo florece una sola vez durante el año. La floración inicia poco tiempo
después de la brotación .Sin embargo, para el caso del huizache, guaje (ver Fig.3),
brasil (ver Fig.7) y palo blanco (ver Fig.1) es común observar que estas dos etapas
inician casi al mismo tiempo (principios de febrero).
Los primeros frutos maduros en la etapa de fructificación se observaron desde la
primer semana de mayo para el mezquite (ver Fig.6), guaje, anacahuita (ver Fig.8) y
palo blanco, en las próximas dos semanas inicia el huizachezyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYXVTSRPONMLJ
,Ja coma (Tello ,1992
reporta información similar para está especie) y la retama (ver Fig.5), posteriormente
en junio el brasil (ver Fig. 7), para finalizar en agosto con el ébano (ver Fig.4). Es
importante señalar que así como se presenta la floración en dos eventos por año
sucede lo mismo con la producción de frutos, siempre y cuando las condiciones
climáticas lo permitan. Esto depende básicamente de las temperaturas presentes en
noviembre y diciembre ya que durante estos meses se cuenta con frutos inmaduros
producto de flores tardías y es muy probable que las temperaturas disminuyan por
debajo de los cero °C ocasionando la muerte de los frutos en desarrollo. Las figuras 10
y 11 ilustra las diferentes etapas fenológicas de las especies maderables en estudio.
Figura 3. Crecimiento vegetativo y floración deyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Leucaena leucocephala (guaje)
Figura 4. Fructificación de Pithecelobiurjfcobano (ébano)
Figura 5. Floración deyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Parkinsonia acuieata (retama)
Figura 6. Brotación y floración de Prosopis glandulosa (mezquite)
Figura 7 . Floración y f r u c t i f i c a c i ó n de Condalia hookeri ( B r a s i l ) .
Figura 8 . Brotacicn y f l o r a c i ó n de Cardia h o i s s i e r (anacahuita).
Fisura 9a. Fructificación de ¿cadayvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
farnesina (huizache)
Figura Sb. Brotación y floración de Acacia famesiana (huizache)
Leucaena ìeucocephala (guaje)
Acacia farne siatìazyutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLJIGFEDCBA
(huizache)
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcb
m1
fi
1
E F ' M ' A ' M' J
1
J
1
A' S ' 0 ' N' D
Parkinsonia acuieata (retama)
E 1 F ' M' A 1 M1 J ' J
b1
' E ' F ' M ' A ' M ' J 'J
1
A 1S1 G
Prosopis glanduiosa (mezquite)
A1 S 1 0
N' D
' E ' F ' M' A ' M1 J ' j ' a ' s ' o
1
N' D
Bumelia celastrma (coma)
Pahecelobium ebano (ébano)
m1
f1
f2
f1
b1
b1
'E'F'M'A'M'J
1
J
a
W
T
d
E'F'M'A' M ' J ' J ' A ' S ' O N D
bl y b2; brotación, fl y f2;floración,mi y m2; maduración de frutos.
Figura 10. Fenología de las especies estudiadas (huizache, guaje, retama,
mezquite, ébano y coma) en la región semiárida de Marín, N. L
zyxvutsrqponmlkj
Celtis ¡eavigatazyutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLJIGFEDCBA
(palo blanco) mlfVUSRQONJIEDA
Cordia boissieri (anacahuita)
m1
Q
m:
JZ
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
b1
E'F'MA'M
J'J'A'S'ON D
Condalia hookeri (brasi!)
f ^ ' a ' i v zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
Ij1 j'a's'c
bl y b2: brotación, fl y f2;floración,mi y m2; maduración de frutos.
Figura 11. Fenología de las especies estudiadas (palo blanco, anacahuita y
brasil) en la región semiárida de Marín, N. L
4.2 Morfología de las semillas de las especies estudiadas
LazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
variación encontrada en las características morfológicas de las semillas es
muy amplia, se cuenta con semillas verdaderas como huizache, mezquite, guaje ébano
y retama; además de frutos que cumplen la función de reproducción como brasil, palo
blanco, anacahuita y coma. En cuanto al tamaño, las diferencias son muy grandes
como sucede con el ébano (1 cm) comparado con la semilla de brasil (0.3 cm). En
cuanto a las formas de las semillas existe una diversidad morfológica desde globosa,
romboide aplanada,
ovalada aplanada hasta circular globosa , predominando esta
última en muchas especies leñosas. Sobresalen los colores verde olivo y el café con
diferentes tonalidades. El peso de la semilla de igual forma presenta una gran variación
desde 0.013 g para el brasil hasta 0.61 g para el ébano (Tabla 4).
Tabla 4. Características morfológicas de las semillas de 9 especies estudiadas
Especie
Forma
Color
A. famesiana
(huizache)
P. glandufosa
(mezquite)
L. leucocephala
(guaje)
P. ébano
(ébano)
P. aculeata
(retama)
B. celastrina
(coma)
C. hookeri
(brasil)
C. boissierí
(anacahuita)
C. leavigata
(palo blanco)
ovalado
globosa
romboide
aplanada
ovalada
aplanada
cuadrada
globosa
elíptica
globosa
redonda
globosa
circular
globosa
romboide
globosa
circular
globosa
Verde-olivo
Tamaño en
cm. L - A
0.5 - 0.4
Peso en Semillas
gramos por kg yxvutsrqponmlkji
0.0713
14,025
café-amarillo
1.0-0.6
0.0937
10,672
café obscuro 0.9 - 0.5
0.0686
14,577
café-rojizo
1.0-0.8
0.6140
1,628
verde- olivo
0.9 - 0.4
0.1156
8,650
verde-olivo
0.7 - 0.5
0.0910
10,989
café-claro
0.3 - 0.3
0.0130
76,923
café-claro
1.7.- 0.9
0.6265
1,595
café claro
O.5.- 0.4
0.0500
20,000
Una característica común en las semillas de las leguminosas es la presencia de
pleurograma, (Niembro, 1988) , esta fue posible apreciarla en mezquite , huizache,
ébano y guaje, en la retama no fue muy visible.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
4.3 infraestructura de la semilla
El estudio sobre la ultraestructura de la semilla se llevó a cabo mediante el
microscopio electrónico de barrido . En base a la divergencia respecto a la
ultraestructura de semillas se consideró necesario presentarlas en forma separada (por
especies). yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Leucaena leucocephala (guaje) : La testa presenta cutícula irregular con un
grosor de (5 (j ), hacia abajo presenta una capa de macroesclereidas constituida por
células delgadas y largas (85 p) arregladas en empalizada, continúa con una capa de
células
pequeñas
(microesclereidas)
ubicadas
en
sentido
perpendicular
a
las
macroesclereidas con tamaño promedio de 15 p. El endospermo es ocupado por una
banda de células de tamaño y forma variable. Las células cotiledonales no muestran su
estructura con claridad (Fig.12).
Prosopis glandulosa (mezquite): En corte transversal hacia la parte exterior se
aprecia la cutícula gruesa de 5 p. La testa esta constituida por dos tipos de células:
macroesclereidas que son alargadas (37.5 p largo y 2.5 p de ancho) en forma de
empalizada y compactas (Fig. 13). Las microesclereidas son muy pequeñas de 7.5 \i ,
debajo de estas células encontramos el perispermo con células ovoides e irregulares.
Las células de los cotiledones tienenn gránulos de almidón de tamaño variable (5.7 p).
figure 12.yvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Lpucaena leucocephala
Figura 13. Prosopis glandulosa
Figura 14. Parkinsonia aculeata
Parkinsonia aculeatazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(retama): La testa presenta cutícula delgada (0.8 p)
y poco irregular, con dos capas de macroesclereidas del mismo grosor, células
largas de 32 p de largo y 1.5 p de ancho, las paredes celulares son delgadas y
muy compactas. Los resultados de la maceración muestran microesclereidas con
tamaño promedio de 26 p. Las células de los cotiledones son muy irregulares con
escasa presencia de almidón (Fig. 14).
Pithecelobium ébano (ébano): Al igual que Parkinsonia aculeata la testa
está constituida por dos capas de macroesclereidas. La cutícula prácticamente no
existe, las macroesclereidas son células con longitud de 110 p y ancho de 5 p muy
compactadas, las microesclereidas son casi circulares con tamaño promedio de 19
p En las células del cotiledón existe gran cantidad de almidón con diferente
tamaño, el promedio es de 7 p de diámetro (Fig. 15).
Acacia farnesiana (huizache): La cutícula es sumamente delgada, la testa
esta formada por dos capas de macroesclereidas en forma de empalizada, la
longitud de estas células es de 60 p Las microesclereidas son muy pequeñas
apenas alcanzan las 5 p, el almidón se presenta en cantidades regulares en las
células de los cotiledones (Fig. 16).
Figura 15.yvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Pithecelobium ebano
Figura 16. Acacia farnesiana
Bumelia celastrínazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(coma) : El endocarpio esta constituido básicamente por
células casi circulares con paredes gruesas las cuales presentan la estructura de las
microesclereidas con tamaño promedio de 30 p. Hacia el interior se aprecian las células
cotiledonales con borde rugosos en su extremos y mediana cantidad de almidón en el
interior (Fig. 17).
Celtis leavigata (palo blanco) : Las fotografías muestran la superficie del
endocarpio muy rugosa constituido por células muy pequeñas, no hay claridad en forma
y tamaño de estas células. Junto a las células del cotiledón es posible apreciar hacia la
parte exterior un capa de células que al parecer son microesclereidas con paredes muy
gruesas e irregulares de 30 p. Las células de los cotiledones (18.46 x 35.5 p) presentan
gran cantidad de almidón (5.7 p) distribuido uniformemente (FigH8).
Condalia hookeri (brasil) : El endocarpio es muy grueso no se distingue
claramente la separación de células solamente una masa densas con células de forma y
tamaño muy irregular. Con la técnica de la maceración es posible apreciar fibras muy
largas (220 p) y microesclereidas de 23 p. Las células cotiledonales muestran la
presencia de abultamientos en forma de media luna los cuales probablemente pudieran
ser almidón (Fig. 19).
Cordia boissieri (anacahuita): El endocarpio esta constituido por una masa con
células casi circulares con diámetro , algunas de ellas, hasta de 40 p ésta masa de
células es bastante gruesa, además dichas células presentan paredes gruesas y muy
compactas. El almidón está presente en la células de los cotiledones con un diámetro de
11p medianamente congregado en ellas. (Fig. 20).
Figura 17.yvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Bumelia celastrina
Figura 19. Condalia hookeri
Figura 18.Celtis laevigata
- Figura 20. Cordia boissieri
La tabla 5 presenta una concentración de información en relación a las
dimensiones de las macro y microesclereidas de las especies en estudio.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcb
Tabla 5. Dimensiones promedio de las macro y microesclereidas en la testa
de las semillas estudiadas.
Especie
A. famesiana
(hu ¡zache)
P. glandulosa
(mezquite)
L leucocephala
(guaje)
P. ébano
(ébano)
P. aculeata
(retama)
B. celastrina
(coma)
C. hookerí
(brasil)
C. boissieri
(anacahuite)
C. leavigata
(palo blanco)
Macroesclereidas
Largo (|i)
Macroesclereidas
Ancho (p)
Microesclereidas
Diámetro(jj) yxvutsrqponmlkjihgfedcba
60.0
3.0
5.0
37.5
2.5
7.5
85.0
3.0
15
110
5.
19
32.0
1.5
26
30
•
220
— • ••
23
• • • • ••
40
• •• •
30
•
Para el caso dezyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYXVTSRPONMLJIHGFEDCBA
Condalia hookeri\a testa aparentemente no presenta macroesclereidas. su estructura esta
constituida básicamente por fibras.
4.4 Técnicas de germinación
El ensayo sobre la germinación de las especies se realizó en forma
independiente para cada especie leñosa. Por lo tanto los resultados obtenidos serán
tratados e interpretados en forma separada por especie. La información obtenida acerca
del proceso de germinación es el resultado de unidades experimentales (valores
promedios) utilizados en este proceso.
Prosopis
glandulosazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(mezquite) : Los resultados sobre las pruebas de
germinación muestran la mayor efectividad para el tratamiento con el ácido sulfúrico
concentrado durante 20 y 10 minutos, en comparación con los demás tratamientos
( incluso el testigo el cual favoreció también la germinación pero con valores más
bajos). El agua a 80 °C (10 minutos) mostró valores intermedios (56.66%) entre 96.66 y
11.66% (Tabla 6). Las temperaturas más elevadas (95 °C) causaron daños al embrión y
aquellas temperaturas menores no suavizaron adecuadamente la testa, ocasionando
una baja germinación. Los valores bajos en la germinación en el tratamiento de
inmersión de semillas en agua a temperatura ambiente (25 °C) durante 72 horas y
aquellas del tratamiento del testigo mostraron la dificultad que presenta el agua para
penetrar al interior de la semillas. Estos resultados concuerdan con aquellos valores
obtenidos en las observaciones con el microscopio electrónico donde se aprecia una
cutícula gruesa 5p y macroesclereidas muy compactadas.
^
Acacia famesiana (huizache) : El tratamiento más adecuado para romper el
letargo del huizache fue el de ácido sulfúrico (20 minutos) con 68.33 % de germinación
(Tabla 6). La velocidad de germinación de esta especie fue 6.83. El tratamiento de
ácido sulfúrico durante 10 minutos promovió el 25 % de la germinación, con una
velocidad baja de 2.3 en comparación al de 20 minutos. Los valores de germinación así
mismo su velocidad de otros tratamientos fueron mínimos (Tabla 7).
Pitheceiobium ébano (ébano): De los tratamientos aplicados, el agua caliente a
95 °C durante 15 minutos produjo cocimiento de las semillas, por ello la germinación
fue nula. Con un tiempo menor de 10 minutos solo germinaron el 5% de las semillas. El
agua caliente a 80 °C durante 10 minutos
causo menor daños a las semillas, el
porcentaje de germinación aumento a 46.66. Los mejores resultados se obtuvieron con
el tratamientos de ácido sulfúrico con 10 minutos( 86.86%) y 15 minutos con un 80 %
de germinación. Con el tratamiento de control sólo germinaron 1.66% de las semillas.
La inmersión en agua durante 72 horas no presentó ventajas en la germinación
(ver Tabla 6).
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Leucaena leucocephala (guaje) : Entre los tratamientos utilizados se observó
que la inmersión de semillas en agua caliente (a diversas temperaturas y tiempos)
favoreció la germinación del 50 a 71 %. En cambio los tratamientos con ácido sulfúrico
en sus diferentes tiempos, presentaron los mejores resultados en porcentajes de
germinación, siendo estos 90 y 98.3 Por el contrario la inmersión en agua a
temperatura ambiente y el testigo no favorecieron la germinación de semillas de guaje.
Se puede pensar que la acción del ácido sulfúrico consistió en una degradación de la
testa sin dañar al embrión y el agua caliente sólo suavizó la testa pero no lo suficiente
para promover la germinación en mayores cantidades (ver Tabla 6).
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUT
Tabla 6. Porcentaje de germinación de 9 especies nativas utilizadas en el presente
estudio.
Especie
T1
12
T3
T4
T5
T6
T7
T8
T9
T10
C. boissierí
41.6
50.0
0.00
0.00
85.0
5.00
0.00
0.00
0.00
0.00
P. aculeata
13.3
6.66
93.3
0.00
45.0
86.6
1.66
48.3
1.66
16.6
B. celastrina
0.00
1.66
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
11.6
0.00
5.00
C. hookeri
25.0
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
11.6
0.00
0.00
P. glandulosa
25.0
23.4
15.0
0.00
56.6
11.6
95.0
96.6
16.6
13.3
L. leucocephala
5.00
15.0
58.3
0.00
50.0
71.6
90.0
98.3
0.00
0.00
P. ébano
6.66
30.0
0.00
0.00
46.6
5.00
86.6
80.0
0.00
1.66
A. farnesiana
1.66
0.00
1.66
0.00
6.66
8.33
25.0
68.3
0.00
8.33
C. leavigata
T1.
T2.
T3.
T4.
T5.
Agua
Agua
Agua
Agua
Agua
caliente
caliente
caliente
caliente
caliente
65
80
95
65
80
°C
°C
°C
°C
°C
15min.
15 min.
15 min.
10 min.
10 min.
T6 .
T7 .
T8 .
T9 .
T10.
Agua caliente 95 °C....10 min.
Acido sulfúrico
10 min.
Acido sulfúrico
20 min.
Inmersión en agua
72 hr.
Control
Parkinsonia aculeatazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(retama): El agua caliente a 95 °C con 15 minutos y 95
°C con 10 minutos favorecieron la germinación en 93.3 y 86.6 % respectivamente. El
ácido sulfúrico con tiempo de 20 minutos y el agua caliente a 80 °C y 10 minutos
presentaron valores muy parecidos
48.3
y 45 % respectivamente. El control fue
superior a algunos tratamientos pues la germinación resultó en un 16.66 %. Los valores
más altos en la velocidad de germinación también corresponden a 95 °C con 15
minutos y 95 °C con 10 minutos con 11.2 y 10.4, no obstante de presentar valores muy
parecidos. El tratamiento con agua caliente a 80 °C 10 minutos obtuvo una velocidad
2.98, superior al tratamiento con ácido sulfúrico con 20 minutos (1.6) esto indica que el
proceso de germinación fue más rápido para el primero a pesar de contar con un
porcentaje menor en la germinación.
Cordia boissieri (anacahuita) : En términos generales, los tratamientos de
inmersión en agua caliente fueron los que favorecieron la germinación en anacahuita,
ningún otro tratamiento promovió la germinación. El tratamiento agua caliente a 80 °C
con 10 minutos presentó los mejores resultados con un 85 % de germinación, seguido
del tratamiento agua caliente a 80 °C con 15 minutos y el tratamiento agua caliente a
65 °C con 15 minutos. Este tratamiento también presentó los valores más altos en la
velocidad de germinación (ver Tabla 7)
Tabla 7. Velocidad de germinación de 9 especies nativas del matorral de zonas
semiáridas de Marín, N. L
ESPECIE
TI
T2
T3
T4
T5
T6
T7
T8
T9
TIO yxvutsrqpon
Cordia boissferi
3.26
2.57
0.00
0.00
4.90
0.22
0.00
0.00
0.00
0.00
135
0.41
11.2
1.00
2.98
10.4
0.85
1.60
0.25
0.85
0.00
0.05
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.75
0.00
0.13
0.85
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.55
0.00
0.00
3.21
1.54
1.50
4.81
10.50
1.40
11.40
9.66
2.50
1.60
0.22
0.45
3.33
0.05
2.51
4.60
10.80
9.83
0.00
0.00
0.41
1.80
0.00
2.70
3.82
0.42
10.40
8.00
0.00
0.19
0.04
0.00
1.16
0.00
0.61
0.65
2.30
6.83
0.00
0.49
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
(anacahuite)
Parkinsonia aculeata
(retama)
Bumelia celastrina
(coma)
Condalia hookeri
(brasil)
Prosopis glandulosa
(mezquite)
Leucaena leucocephala
(guaje)
Pithecelobium ébano
(ébano)
Acacia famesiana
(huizache)
Celtis leavigata
(palo bco.)
T1. Agua caliente..65 °zyutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLJIGFEDCBA
C.zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
h45 m n.
T6. Agua caliente..95 °C....10 min.
T2. Agua caliente..80 °C...15.min.
T7 . Acido sulfúrico
10 min.
T3. Agua caliente..95 °C...15 min.
T8. Acido sulfúrico
20 min.
T4. Agua caliente..65 °C...10 min.
T9 . Inmersión en agua
72 hr.
T5. Agua caliente..80 °C...10 mín.
T10. Control
Condalia hookeri (brasil) : El tratamiento con agua caliente a 65 °C durante 15
minutos provocó una germinación del 25 % con una velocidad de germinación de 0.85
esta velocidad muestra que la emergencia se efectúo en diferentes tiempos. El
tratamiento con ácido sulfúrico durante 20 minutos favoreció la germinación en sólo en
11.66% de las semillas con una velocidad de 0.55 (ver Tabla 7), lo cual indica que la
emergencia fue menos rápida que el tratamiento mencionado anteriormente.
Bumelia celastrina (coma). Existen antecedentes de la dificultad que tiene esta
especie para germinar (Afanasiev, 1942 citado por Bonner,1974). La germinación de la
coma es demasiado lenta. Las semillas de esta especie necesitan un periodo de
prueba de 60- 90 días. El trabajo realizado comprueba dichos antecedentes ya que
hasta la fecha solo un tratamiento con ácido sulfúrico 20 minutos ha mostrado algunos
resultados favorables (11.66 %) después de 50 días de establecida la prueba (ver
Tabla 6).
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Celtis leavigata (palo blanco). Esta especie fue la única que no germinó con los
tratamientos utilizados. Después de obtener estos resultados negativos sobre la
germinación de esta especie, a manera de observación adicional fueron colocadas las
semillas en pequeñas charolas cubriéndolas con tierra de la región y regándolas cada
vez que fuera necesario. Después de dos meses inicio la germinación esporádicamente
hasta llegar al 25 % en un lapso de tres semanas.
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFED
4.4.1 Análisis estadístico para las pruebas de germinación
Los resultados en el análisis de varianza (Tabla 8) prueban que existe diferencia
altamente significativa en la respuesta que tuvieron las semillas de las especies en
relación a los tratamiento.
Tabla 8. Resumen de los análisis de varianza para el porcentaje de germinación
de 9 especies nativas, estudiadas bajo un diseño completamente al azar.
Especie
Gl
SCT
Cordiaboissieri
9
11030.806
M
CME
Fcal.
C.V yxvutsrqponmlkjihg
7,76
161,97
22,67
(anacahuita)
9
6143.531 "
30,794
22,16
20,42
9
9332.759 "
25,819
40,16
21,93
9
6028.208 "
4,743
141,20
18,77
Condalia hookeri (brasil) 9
2097.981 **
17,159
13,58
119,09
907.461**
10,282
9,80
122,91
13555.226 **
24,169
62,31
20,30
10882.612 **
21,720
55,66
20,03
Prosopis glandulosa
(mezquite)
Parkinsonia aculeata
(retama)
Acacia famesiana
(huizache)
Bumelia ceiastrina
9
(coma)
Leucaena leucocephala 9
(guaje)
Pithecelobium ébano
9
(ébano)
Celtis leaviqata
9
0 NzyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
.S.
0
0
0
(palo blanco)
G l ; Grados de libertad
CMT ; Cuadrado medio del tratamiento.
CME ; Cuadrado medio del error.
F. c a l ; F. calculada.
C.V;
Coeficiente de variación
**.- Altamente significativo
N.S.- No significativo
El coeficiente de variación parayvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Bumelia celastrína y Condalia hookeri son muy
elevados esto se debe probablemente al efecto negativo que presentó la mayoría de los
tratamientos en la germinación de las semillas.
Dado que se presentaron diferencias altamente significativas (P >0.01) en los
tratamientos, se compararon las medias para
localizar
los
tratamientos
más
sobresalientes en cada una de las especies .Los resultados indican que para anacahuita
el mejor tratamiento fue el 5. En el caso de mezquite, huizache, guaje y ébano los más
sobresalientes son el 7 y 8 no existiendo diferencia significativa entre.
ellos a excepción del huizache .zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
En retama no hay diferencia estadística entre el
tratamiento 3 y 6 . Para brasil los resultados muestran un diferencia entre los
tratamientos 1 y
8 . El tratamiento 8 para el caso de la coma es también el más
sobresaliente(Tabla 9).
Tabla 9. Prueba de Comparaciones múltiples( tukey, Zar, 1984) realizada sobre los
valores medios en germinación de 9 especies nativas.
Retama
Huizache
Brasil
Coma
guaje
Ebano
Palo bco.
19.25 c
0.00
21.89 a
0.00
6.99
11.54 c
0.00
24.19 c
11.54 cd
0.00
0.00
2.88 be
17.12 d
24.09 b
0.00
0.00
16.99.C
48.45 a
14.94 c
0.00
0.00
36.15 be
0.00
0.00
4
0.00
24.83 be
18.81 c
0.00
0.00
0.00
12.06 de
30.42 b
0.00
5
45.56 a
35.55 b
31.06 b
11.54 c
0.00
0.00
29.63 c
31.86 b
0.00
6
12.76 c
15.20 c
46.15 a
12.76 c
0.00
0.00
42.7 ab
8.65 cd
0.00
7
0.00
49.03 a
2.88 d
12.24 b
0.00
0.00
47.30 a
46.15 a
0.00
8
0.00
49.61 a
32.45 b
39.79 a
12.88 b
14.55 a
50.19 a
43.84 a
0.00
9
0.00
17.74 c
2.88 d
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
10
0.00
16.99 c
18.21 c
12.76 c
0.00
8.65 ab
0.00
5.77 cd
0.00
Tratamiento
Anacahuita
Mezquite
1
29.93 b
21.61
2
33.10 b
3
c
Literales diferentes indican di
T1.Agua caliente..65 °C...15 min.
T2.Agua cal ¡ente..80 °C...15.min.
T3.Agua caliente..95 °C...15 min.
T4.Agua caliente..6 5 °C...10 min.
T5.Agua caliente..80 °C...10 mn.
ef
ias significativas ( p> 0.01 )
T6 .Agua caliente..95 °C....10 min.
T7 .Acido sulfúrico
10 min.
T8 .Acido sulfúrico
20 min.
T9 .Inmersión en agua
72 hr.
T10. Control
4.5 Proceso de germinación y desarrollo de las plántulas
yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZV
Prosopis glandulosa (mezquite) : Una vez que inicia el proceso de imbibición,
después de proporcionar algún tratamiento para favorecer la germinación la plántula
emerge del suelo a los 6 días con temperaturas de 30 °C. El crecimiento de la radícula
es muy vigoroso mostrando a esta temprana edad el tipo de raíz en estado adulto. La
velocidad de germinación en los tratamientos muestra diferencia altamente significativa,
sobresaliendo los tratamientos 7 y 8 con 11.4 y 9.66 respectivamente (ver Tabla 7),
estos valores altos nos indican que la germinación se realizó en un lapso de una
semana por lo anterior se puede afirmar que para romper el letargo del mezquite el
ácido sulfúrico resulta ser el más efectivo. La plántula emerge con sus cotiledones
(germinación epigea) formando éstos sus primeras hojas .
Como fue señalado anteriormente, la radícula crece rápidamente, esto le permite
a la plántula un sostén muy bueno al mismo tiempo le brinda la oportunidad para
extraer agua con cierta facilidad para el crecimiento de la parte aérea la cual muestra
también un desarrollo rápido para las 2 semanas después de la emergencia es posible
encontrar plántulas con altura de 8 cm yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Acacia famesiana (huizache) : La semilla contiene grandes reservas ya que
iniciándose el proceso de germinación la radícula crece rápidamente alcanzando los 5
cm en 6 días. Durante este tiempo los cotiledones ya emergieron (germinación epigea).
e inician a fotosintetizar para la formación de las siguientes hojas.
Desarrollo de la plántula. Las hojas cotiledonales son casi circulares de 6 a 8
mm de diámetro, la plántula crece rápidamente mostrando una altura de 6 cm en las
próximas dos semanas.
Parkinsonia
aculeata
(retama).
Con
los
tratamientos
que
inducen
la
germinación es posible apreciar la emergencia de la radícula al tercer día, el proceso
es muy rápido en 2 o 3 días más la radícula alcanza de 4 a 5 cm. La velocidad de
germinación es muy rápida pues se obtuvieron valores muy altos en algunos
tratamientos: 3 y 6 (ver Tabla 7). A los 5 días es posible observar los cotiledones afuera
de la superficie del suelo (germinación epigea).
En cuanto al desarrollo de la plantula es muy clara la diferencia que tiene
respecto a las demás especies, en un lapso de 2 semanas algunas alcanzan una altura
de 6 cm.
Cordia boissieri (anacahuita). En forma natural el proceso de germinación se
lleva a cabo una vez que la semilla a permanecido un tiempo razonable (2 o 3 meses)
en el suelo. Este tiempo necesario le permite a los embriones un período de
maduración, así mismo, una vez que la testa es abierta por condiciones climáticas o el
daño de roedores (ardilla) puede iniciar el proceso.
En la tabla 7 se muestra la velocidad de germinación para todas las especies,
dándonos cuenta que ésta especie presenta una baja velocidad probablemente debido
a una maduración desuniforme de las semillas.
La semilla (fruto) de esta especie presenta cuatro embriones, de los cuales
regularmente sólo dos están completamente desarrollados, de tal manera que una
semilla tiene la capacidad para producir más de una plántula. En las observaciones
efectuadas se aprecian semillas sólo con dos plántulas, la emergencia del epicotilo se
presenta a los 8 días después que se muestra la radícula abriendo el endocarpio. La
germinación es epigea.
Desarrollo de la plántula. Una vez que ha emergido la plántula, inicia el
crecimiento del talluelo y las hojas cotiledonales, después de tres semanas es posible
tener una plántula aproximadamente de 5 cm. El primer par de hojas verdaderas
aparecen hasta la cuarta semana, dependiendo de las condiciones climáticas.
Pithecelobium ébanozyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(ébano) : Después que la radícula rompe la testa el
crecimiento de ella es muy rápido. En cuatro días es posible que alcance los 6 cm
aproximadamente, a los 6 o 7 días se lleva a cabo la emergencia, dejando los
cotiledones en el interior del suelo (presenta germinación hipógea). La velocidad de
germinación es muy rápida (ver Tabla 7) lo cual nos indica que el embrión solo necesita
agua para iniciar el proceso.
Desarrollo de la plántula. Dado que la semilla presenta cotiledones bien
desarrollados, los días siguientes a esta etapa, el crecimiento del talluelo y hojas fue
»
vigoroso, alcanzando una altura de 7 a 8 cm los primeros 15 días después de este
tiempo el crecimiento se redujo considerablemente (Fig. 21).
* Condalia hookeri (brasil). El proceso de germinación se presentó muy
desuniformemente y con muy poco vigor. La radícula crece en 5 o 6 días apenas un
centímetro, de igual forma lo hacen las hojas cotiledonales, en un lapso de 10 días es
posible apreciarlas de 4 o 5 mm
Desarrollo de la plántula. El crecimiento de la plántula es muy lento en dos meses
después de la germinación apenas se apreciaron 4 pares de hojas de tamaño reducido
(0.8 cm) con una altura de cinco cm. (Fig. 22).
Bumelia celastrína (coma). El proceso de germinación es sumamente lento, lo
cual se corrobora con una velocidad de germinación muy baja ; 0.75 para el tratamiento
8 (ver tabla 7). La germinación es hipógea, el primer par de hojas verdaderas se
presenta como a los 15 dias después de la emergencia y desarrollo de la radícula, la
cual tiene crecimiento muy lento. Después de 8 semanas apenas las plántulas han
alcanzado un altura de 6 cm con 2 a 3 pares de hojas verdaderas (Fig. 23).
Leucaena leucocephalazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(guaje). El proceso de germinación es sumamente
vigoroso, iniciada la imbibición ayudada por algún tratamiento. La radícula inició su
emergencia a los 4 días creciendo rápidamente y alcanzando 5 cm en los próximos tres
días. La emergencia se presentó al sexto día mostrándose los cotiledones todavía con la
testa adherida (germinación epigea). La velocidad de germinación fue muy rápida en
algunos tratamientos (ver Tabla 7).
Desarrollo de la plántula. La hojas cotiledonales presenta forma circular de color
verde intenso alcanzando poco más de un cm de diámetro, permaneciendo por tiempo
indefinido, aproximadamente al tercer día inicia el crecimiento de las hojas verdaderas,
alcanzando los cinco cm en las dos semanas siguientes (Fig. 24).
Celtisjeavigata (palo blanco). Dado que esta especie fue la única en la cual no
se estimuló la germinación, no se cuenta con información en relación al proceso de
germinación y desarrollo de plántula.
Figura 21. Plántulas de ébano después de 3 semanas de la germinación
Figura 22. Plántulas de brasil después de 8 semanas de la germinación
Figura 23. Plántulas deyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Bumelia celastina (coma) después de 3 semanas
de la germinación
Figura 24. Plántulas de Leucaena ¡eucocephala (guaje) después de 2 semanas
de la germinación
5. DISCUSION
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIH
Las especies estudiadas presentan un amplio rango de tolerancia para factores
físicos (temperatura, precipitación, topografía, suelo etc.) y bióticos (plagas y
enfermedades) . Los suelos pedregosos y calcáreos son ocupados poryxvutsrqponmlkjihgfed
Bumelia
celastrina (coma) Bonner,( 1974) señala que esta especie es extremadamente
resistente a la sequía y Cordia boissieri (anacahuita), esto coincide con los resultados
obtenidos por Heiseke y foroughbakhch,(1985) probablemente le favorecen en su
crecimiento, Los suelos profundos donde se acumula el agua son ocupados por Celtis
leavigata (palo blanco), y Pithecelobium ébano (ébano) y en algunas ocasiones por
Acacia famesiana
(huizache). Prosopis glandulosa
(mezquite) y
Parkinsonia
celastrina (retama) regularmente se localizan en suelos profundos y planos.
En términos generales, todas las especies inician la brotación en febrero,
observaciones
efectuadas
por Abrego,
(1991)
en
Prosopis
coincide con
lo
mencionado. Esto es, cuando la temperatura empieza a aumentar, al mismo tiempo es
posible apreciar los primordios florales. Estas actividades simultáneas que realizan las
plantas se debe básicamente a la poca oportunidad que tienen de recibir lluvias ya que
estas se concentran durante los meses de agosto y septiembre (ver tabla 2), aunado a
las altas temperaturas elevadas en los meses de mayo y junio.
La fructificación de casi todas las especies con excepción de Acacia farnesiana,
Parkinsonia celastrina y Condalia hookeri se realiza en dos ocasiones, la primera
inicia desde el mes de mayo, considerada como la más abundante (dependiendo de las
condiciones de lluvia del año anterior). En la segunda( octubre y noviembre) la cantidad
de frutos disminuye considerablemente a medida que la actividad fisiológica de las
plantas se reduce, en función de la estación del año. En el caso det-huizache, retama y
brasil se presenta un sólo período de fructificación bastante prolongado desde mayo
hasta agosto. La única especie que se ve afectada considerablemente por las bajas
temperaturas (menos de 0 °C) es el guaje. No obstante, se recupera con un crecimiento
tan vigoroso que inmediatamente produce flores y posteriormente frutos. El daño que
sufre el guaje es debido a que no corresponde a la vegetación nativa del área en
estudio. Esta última especie prácticamente se ha naturalizado debido a la alta
adaptabilidad y comportamiento en las condiciones edafoclimáticas extremas del
noreste de México.
De las especies estudiadas sólo la anacahuita no es planta microfila, a diferencia
de las demás, sus hojas son bastante grandes sobrepasando los 10 cm de largo, para
poder sobrevivir en lugares donde la precipitación es escasa,yxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPN
Cordia boissierí deja
caer sus hojas en los períodos más críticos de sequías prolongadas (invierno y parte de
verano).
La semillas de todas las especies estudiadas permanecen varios meses en el
suelo recibiendo temperaturas en algunas ocasiones superiores a 45 °C en el verano, y
debajo de 0 °C, en el invierno, estos cambios bruscos de temperaturas y al mismo
tiempo el ataque de hongos, bacterias y el daño ocasionado por escarabajos del
géneroyvutsrponmlkihgfedcbaSRPMLKHCBA
Acanthoscelides , tlacuache, ardilla y otros roedores, además el transito desemillas por el tracto digestivo de aves,
ganado vacuno y caprino, facilitan su
germinación una vez que la testa ha sido removida por cualquiera de estos agentes.
Chazaro, (1976) señala que Acacia pennatula tiene su principal medio de propagación
una vez que las vainas son consumidas por el ganado.
La presencia escasa de brasil, coma , palo blanco, en la comunidad vegetal es
debido posiblemente a la presencia de letargo físico proporcionado por la testa muy
dura y gruesa, además de la posible existencia de sustancias inhibidoras que no le
permiten a la semilla germinar aún que la testa sea removida, aunado al proceso
germinativo extremadamente lento que tienen, sobresale la coma en este último
aspecto. Rolston, (1978) señala que la testa dura e impermeable al agua, protege al
embrión de tal forma que en algunas especies pueden pasar años sin que se aumente el
contenido de humedad internamente, lo cual ocasiona que no se inicie el proceso de
germinación. zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Morfología de la semilla
De las especies estudiadas soloyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Acacia farnesiana (huizache), Prosopis
ganduiosa
(mezquite),
Leucaena leucocephala
(guaje), Pithecelobium
ébano
(ébano) y Parkinsonia aculeata (retama) son semillas verdaderas las demás especies
tales como ; Bumelia celastrina (coma) Cordia boissieri (anacahuita) Condaiia
hookerí (brasil) y Celtis ieavigata (palo blanco) son considerados botánicamente como
frutos con un endocarpio muy duro y mesocarpio carnoso.
Existe una gran variación en las características de estos frutos y semillas en
cuanto a forma, color y grosor de la testa, asimismo en tamaño y peso. Estas
características influyen notablemente sobre el valor nutritivo de frutos y semillas, las
cuales son muy apetecibles y consumidas por la fauna silvestre y el ganado. Debido a la
testa dura e impermeable que presentan la mayoría de las semillas cuando son
consumidas no son digeridas y sólo se suaviza la testa permitiendo de esta manera que
la reproducción natural sea más rápida. Este proceso ha permitido la expansión de
algunas especies como el huizache y mezquite, las cuales en algunas áreas del estado
de Veracruz han ocasionado problemas al ser consideradas como malezas en los
pastizales por la existencia de cantidades muy grandes de individuos por unidad de
superficie (Chazara,1976).
zyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYVUTSRPONMLKJIHGFEDCBA
Uitraestuctura de la semilla
Las observaciones en el microscopio electrónico de barrido muestran cierta
similitud en la composición de las semillas para el caso de las leguminosas arbustivas.
La testa de las semillas esta constituida por una o dos capas de células llamadas
macraesclereidas arregladas en empalizada muy compactadas y con longitudes
bastante grandes, en el caso de los frutos, el endocarpio es sumamente grueso, por
ello se explica en cierta manera la dificultad que tiene el agua para penetrar al interior
de la semilla sucediendo lo mismo para el intercambio de gases ocasionando que la
germinación se dificulte, independientemente de otros factores que puedan existir. En
términos generales, se puede apreciar que las especies que presentan abundante
cantidad de almidón en las células cotiledonales presentaron buena germinación o bien
un alto valor en la velocidad de germinación. Limón, (1994) encuentra que, para el caso
del frijol, aquellas especies con abundante contenido de almidón tienen una velocidad
de germinación más rápida.
Los usos que ha tenido la vegetación por la población ha cambiado en algunos
aspectos. Por ejemplo los frutos silvestres que servían de golosinas en décadas
anteriores se han olvidado y actualmente la población prácticamente ni los conoce. El
uso irracional de las especies maderables ha sustituido actualmente la flora de la
región. Sin embargo, persiste aún el uso excesivo de muchas especies valiosas tales
como el mezquite para la leña, carbón vegetal y forraje. La especieyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZV
Pithecelobium
ébano (ébano) continua siendo una especie importante por la producción abundante de
sus semillas (maguacata) como alimentación del ganado y calidad de su madera .
Acacia famesianazyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPONMLKJIHGFEDCBA
(huizache) continua proporcionado su follajezyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZYV
y frutos para
alimentación de las cabras y ganado vacuno de zonas áridas y sem¡áridas del noreste
de México.
Técnicas de germinación
Los porcentajes elevados de germinación en el caso de Acacia famesiana
(huizache), Pithecelobium
ébano (ébano), Prosopis glandulosa
(mezquite) y
Leucaena ieucocephala (guaje), bajo la aplicación de tratamientos con ácido sulfúrico
concentrado, se deben al rompimiento de las macroesclereidas sin causar daño al
embrión. Esto proceso facilitó la penetración del agua dentro de la semilla favoreciendo
los procesos bioquímicos de las mismas. Estos resultados son parecidos a los
reportados por Foroughbakhch, (1989) en su trabajo sobre la germinación de varias
especies de la vegetación del noreste de México. Pharande,(1990) en sus estudios
sobre la germinación de Prosopis juiiflora y Prosopis giandutosa, señala que el
ácido sulfúrico concentrado durante 10 minutos proporciona buenos resultados.
En términos generales, los tratamientos con agua caliente permitieron la
germinación de casi todas la especies pero con porcentajes bajos, a excepción de
Parkinsonia aculeata (retama) la cual mostró excelentes resultados con estos
tratamientos. El beneficio del agua caliente coincide con el trabajo de Passos, ( 1988) el
cual reporta porcentajes de germinación elevados para Leucaena Ieucocephala. En el
caso de la retama el ácido sulfúrico no mostró los mismos efectos que con las otras
leguminosas, probablemente es necesario aumentar el tiempo de inmersión. En las
semillas de Pithecelobium
ébano (ébano) el agua caliente (95 °C) provocó
quemaduras al embrión ocasionando daños lo que impidió su germinación.
El tratamiento de inmersión en agua a temperatura ambiental no mostró
resultados favorables para ninguna de las especies. Este tratamiento indica que la
mayoría de las especies presentan testas gruesas e impermeables a la penetración del
agua y gases de tal forma que las semillas permanecen varios meses en el suelo y no
germinan, lo anterior coincide con Rolston, (1978) el cual señala que testas duras e
impermeables protegen al embrión e impiden la germinación en ciertas especies, éste
proceso puede darse después de varios años.
El testigo no favoreció la germinación de ninguna de las especie en estudio.
Estos resultados indican que las semillas de la especies maderables requieren
forzosamente de un tratamiento para iniciar la germinación. Existen tratamientos
naturales que proporcionan una serie de factores que permiten el rompimiento de la
testa y la penetración del aguacal interior de la semilla, estos procesos naturales
normalmente son muy lentos y con un porcentaje de germinación bajo.
Los valores más altos en relación a la velocidad de germinación fueron para :
Leucaena leucocephala (guaje), Prosopis glandulosa (mezquite), Pithecelobium
ébano (ébano) y Parkinsonia aculeata (retama) en diferentes tratamientos, esto
debido a la concentración elevada de almidón que presentan las células cotiledonales
el cual se transformará en azucares para proporcionar energía en el proceso
germinativo.
Proceso de germinación
Una vez que se inicio la germinación se pudo constatar que las plántulas con
menor vigor correspondieron a Condalia hookerí (brasil), Bumelia celastrina (coma) y
Celtis leavigata (palo blanco), siendo estas las más pequeñas y con menores reservas
yxvutsrq
alimenticias. Por el contrario semillas grandes comoyxvutsrqponmlkjihgfedcbaZVUTSRPNMLIHEDCBA
Cordia boissierí (anacahuita),
Leucaena leucocephaia (guaje) Pithecelobium ébano (ébano), Parkinsonia aculeata
(retama), la germinación fue rápida de igual forma el crecimiento de las plántulas,
Prosopis glandulosa (mezquite) y Acacia farnesiana (huizache) a pesar de contar
con tamaño de semilla relativamente pequeña, el crecimiento de la plántula es
acelerado. El desarrollo lento de las especies primeramente mencionadas, es posible
se deba al efecto de sustancias inhibidoras existentes que no fueron removidas en un
forma eficiente.
6. CONCLUSIONES
zyxwvutsrqponmlkjihgfedcbaZYWVUTSRQPON
Los resultados de este trabajo pese a los límites derivados de su simple diseño
experimental y a las condiciones climáticas uniformes, conducen al estudio morfológico,
anatómico (ultraestructura) y fenològico de semillas de 9 especies maderables de
zonas áridas del centro del estado de Nuevo León, así mismo a la estandarización de
pruebas de germinación de especies forestales de uso múltiple. Se sometieron a
diferentes estudios y al proceso de germinación bajo la aplicación de diferentes
tratamientos con el fin de certificar la calidad de las semillas, de esta manera se
proporciona información para un manejo adecuado de los matorrales espinosos de
zonas áridas. Considerando lo anterior se puede concluir que :
Los objetivos planteados en esta investigación fueron cumplidos dado que se
identificaron los factores físicos y bióticos que intervienen en el proceso de germinación
y establecimiento de las especies en estudio, así como las características morfológicas
y anatómicas de las mismas.
Se comprobó que efectivamente las características estructurales y fisiológicas de
las semillas están directamente relacionadas con la capacidad para germinar.
Los suelos pedregosos y con pendientes más pronunciadas es donde se
establece la coma y anacahuita, aquellos profundos y húmedos son preferidos por el
palo blanco, huizache y ébano, las demás especies es posible encontrarlas en ambos
ambientes.
Algunas especies (retama, guaje, huizache y brasil) cumplen sus diferentes
etapas fenológicas en un solo evento, cuya duración dependerá de la presencia de
lluvias. Aquella que tienen dos eventos (anacahuita, mezquite, ébano, coma y palo
blanco) están limitadas por la presencia de temperaturas frías a finales de otoño y
principios del invierno.
En términos generales, los tratamientos con ácido sulfúrico fueron los más
efectivos para promover la germinación en las especies estudiadas.
El ácido sulfúrico concentrado no ocasionó daños al embrión. El agua caliente 95
°C durante 10 y 15 minutos causó quemaduras en ébano y mezquite, para la semilla de
retama resulto ser el más efectivo.
La existencia de una o dos capas de macroesclereidas en la testa de la semilla
de las leguminosas impide que exista intercambio de gases y entrada de agua al
embrión evitando con ello que las especies en estudio germinen fácilmente. Para el
caso de las demás especies (palo blanco, brasil, coma y anacahuita) el endocarpio muy
grueso y con células muy compactas evita la germinación.
Las especies con mayor cantidad de almidón en las células del los cotiledones
germinaron más rápido.
Probablemente en el palo blanco, brasil y coma, además del endocarpio duro y
grueso existen inhibidores que impiden la germinación.
En forma natural el proceso de germinación se acelera por el consumo de
semillas por la fauna silvestre y el ganado, además de los cambios de temperatura a
los que están expuestas.
Los resultados obtenidos en esta investigación proporcionan las bases y los
elementos necesarios para ponerlos en practica y participar en el mejoramiento de
nuestro ambiente el cual se encuentra muy deteriorado a consecuencia de las
actividades realizadas por el hombre.
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